Азопирамовая и фенолфталеиновая проба инструкция по применению

Друзья, сделали для вас еще один полезный ролик про азопирамовую пробу. Он без звука, поэтому одинаково важно как посмотреть видео, так и прочитать текст ниже.

Если у вас будут вопросы, обязательно спрашивайте в комментариях.

Что такое азопирамовая проба?

Это способ проверки качества предстерилизационной очистки (ПСО) инструментов. Проще говоря, мы проверяем, не остались ли на инструментах даже после ПСО следы крови и биологических жидкостей.

В случае некачественной очистки инструмента рабочий раствор азопирама станет фиолетовым. Если ПСО проведена хорошо, раствор не поменяет цвет.

Кому это нужно знать?

Косметологам, мастерам маникюра и педикюра и, само собой, работникам медицинских учреждений. Всем, кто при работе с инструментами может повредить кожу клиента.

Как правильно проводится азопирамовая проба?

Шаг 1. Приготовление рабочего раствора.

Есть два варианта.

Первый — приготовление азопирамовой пробы из сухих реагентов.

Для этого нужно смешать все компоненты реактива в следующих пропорциях:

• амидопирин – 100 г;
• солянокислый аналин – 1-1,5 г,
• до необходимого объема (около 1 л) добавить этиловый спирт 95% концентрации.
• полученную жидкость соединить с 3%-м раствором перекиси водорода в одинаковых пропорциях.

Готовая жидкость называется рабочим раствором.

Раствор готовят непосредственно перед проведением пробы и используют в течение двух часов после смешивания компонентов. В противном случае эффективность пробы будет нулевой.

Если реактив хранится в помещении, где температура воздуха выше 25 градусов, он будет розоветь быстрее.

Готовый раствор может пожелтеть, это допустимо, если нет осадка.

Такой вариант приготовления раствора подходит для учреждений, имеющих медицинскую лицензию и осуществляющих медицинскую деятельность.

Но так как в Российской Федерации ограничен оборот этилового спирта и его розничная продажа без рецепта или лицензии, следует воспользоваться вторым вариантом.

Второй вариант – использование готового «Азопирам-Комплекта».

Такой набор значительно облегчит приготовление азопирамовой пробы. В наборе всего два пузырька с реактивами. Реактив из маленького пузырька нужно перелить в большой пузырек. Получается готовый раствор азопирама.

Шаг 2. Добавление перекиси водорода.

Для проведения  азопирамовой пробы потребуется 3%-я перекись водорода.

На чистую салфетку с помощью пипетки наносим одинаковое количество готового рабочего раствора азопирамовой пробы и перекиси водорода, например по пять капель.

Шаг 3. Проведение пробы.

Протираем салфеткой режущие элементы инструмента или те его части, которые контактируют с биологическими жидкостями или кровью. В видео мы для примера взяли пинцет.

Если инструмент имеет выемки или шероховатости (например, фрезы, а в нашем случае это ложка Уно), средство используется в виде капель. Для этого мы в равных долях смешаем Азопирам с 3%-й перекисью водорода и нанесем пипеткой 2-3 капли на инструмент. Это необходимо для того, чтобы раствор прошел по всем каналам и стыкам деталей инструмента.

После нанесения средства нужно подождать 1 минуту. В течение этого времени раствору дают возможность стечь на чистую белую салфетку (это условие одно из самых важных).

Результаты пробы мы увидим на салфетке спустя минуту. Результат, полученный через более длительное время, диагностического значения не имеет.

Если ПСО проведена некачественно, и на инструментах остались следы крови или биологической жидкости, через минуту на салфетке появится фиолетовое пятно, через несколько секунд оно станет розовато-синим.

Если пятно на салфетке имеет бурый оттенок, значит, на инструментах есть ржавчина или хлорсодержащие окислители. Розовый цвет говорит о наличии моющих средств.

В нашем случае реактив не дал положительных результатов, поэтому считаем, что инструмент прошел ПСО, и повторно ее осуществлять не нужно.

Контролю подлежат: 

• в стерилизационной — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; 
• при децентрализованной обработке — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц.

Как проверить пригодность раствора?

При длительном хранении препарата следует проверить его пригодность перед использованием. Перед тем, как делать азопирамовую пробу на поверхности, 2-3 капли раствора наносят на кровяное пятно. Если в течение 60 секунд оно окрашивается в фиолетовый цвет, то реактив пригоден к использованию. Если окрашивания не происходит, то пользоваться таким раствором нельзя.

Несколько важных правил проведения азопирамовой пробы:

• Окрашивание, наступившее позже одной минуты после обработки, не учитывается при анализе результатов;
• Температура инструментов, которые проходят исследование, должна быть комнатной. Не допускается проведение пробы горячих предметов;
• Запрещается держать рабочий раствор (с перекисью водорода) на ярком свету или в комнате с высокой температурой;
• Рабочий раствор «Азопирама» необходимо использовать в течение двух часов, подготовительный раствор допускается хранить при комнатной температуре один месяц, в холодильнике – два месяца.
• Емкость с раствором должна быть герметично закрыта, а стекло — темным.
• После проведения пробы остатки раствора необходимо удалить с инструмента независимо от результата. Для этого предметы нужно сполоснуть водой или протереть тампоном, смоченным водой или спиртом. После этого при необходимости повторяют предстерилизационную обработку или проводят стерилизацию.
• Результаты всех проведенных проб фиксируются в специальном журнале учета качества ПСО. Если исследование показало наличие загрязнений, вся партия инструментов должна пройти повторную обработку.

Приобрести «Азопирам-Комплект», а также журналы контроля качества ПСО можно на нашем сайте.

На видео мы показали, как проводится азопирамовая проба. 

     Медицинский инструментарий многократного назначения в процессе использования в лечебных и поликлинических учреждениях должен после каждого пациента подвергаться дезинфекционной очистке и стерилизации. Перед этапом стерилизации проводится предстерилизационная обработка инструментов с помощью моющего раствора определённой концентрации. Основная цель предварительной обработки — добиться удаления жировых и белковых отложений с поверхности предметов. После выдержки в моющем растворе инструменты промываются в проточной воде из-под крана и затем в дистиллированной. Постановка азопирамовой и фенолфталеиновой пробы проводится для оценки качества очистки и по СанПину должна проводиться перед каждым этапом стерилизации. Фенолфталеиновая проба определяет наличие остатков моющих веществ. Азопирамовая проводится с целью выявления хлорсодержащих компонентов, остатков крови, ржавчины, кислот.

     В медицинских учреждениях для азопирамовой пробы приобретается аптечный раствор, который перед использованием смешивается с перекисью водорода. Оценка реакции определяется путём нанесения нескольких капель на поверхность инструмента, на сложные соединения деталей обрабатываемых приборов, в иглы шприцов. Инструмент держится над белым тампоном, результат окрашивания определяется в течение одной минуты. Оценка реакции после этого срока считается недостоверной. В полостях, иглах, катетерах раствор оставляют на одну минуту, после чего выдавливают на тампон. Появившееся розово – фиолетовое окрашивание говорит о наличии остатков крови. Буроватое окрашивание реактива происходит при наличии на инструментах следов ржавчины, хлорсодержащих препаратов, окислителей.

     Не всегда в медицинских учреждениях существует возможность приобрести азопирам готовый раствор, а процесс самостоятельного изготовления может быть не точен. В этом случае можно приобрести заводской набор реагентов, предназначенный для приготовления азопирама и хранящийся до 2-х месяцев. При необходимости с помощью этого раствора готовят рабочий, добавляя в него 3% аптечную перекись водорода. Соотношения перекиси и азопирама соблюдают 1:1.

     Азопирам комплект винар состоит из флакона солянокислого анилина и флакона амидопирина. Приготовить рабочий раствор достаточно просто, для этого анилин смешивается с амидопирином, и полученная масса доводится до 100 миллилитров этиловым спиртом в 95%. Полученного флакона хватает примерно на 6000 исследований, при условии использования за один раз 1-2-х миллилитров. Приготовленный раствор хранится в холодильнике до 2-х месяцев, при комнатной температуре в тёмном месте до одного месяца.

     Постановка фенолфталеиновой и азопирамовой пробы проводится на одном проценте инструментов, подвергшихся предстерилизационной очистке, но при любом количестве исследуемых предметов их не должно быть меньше 3-5 штук. Результаты проведения проб заносятся в специально оформленные журналы с указанием даты, времени, количества инструментов и наличии реакции. Несоблюдение проведения проб может привести к возникновению аллергий разной степени тяжести, а при использовании инструментов в хирургии и на станциях переливания крови и к пирогенным реакциям организма.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки
оценивается по отсутствию положительных
проб:

1. На кровь – азопирамовая проба;

2. На моющие средства – фенолфталеиновая
   проба;

3. На масляные препараты – проба с суданом.
   Эта проба ставится только на изделия,
   испачканные масляными препаратами.

Мед. сестра самоконтроль осуществляет
после каждой обработанной партии,
старшая мед. сестра – один раз в неделю,
ЦГСЭН – один раз в месяц в отделениях
хирургического профиля и один раз в
квартал – в отделениях терапевтического
профиля.

Условия проведения контроля

1. Контролю подлежит 1% от обработанной
   партии, но не менее 3-5 штук.

2. Инструмент должен быть холодным и
   сухим.

При несоблюдении этих условий может
быть ложноположительная реакция.

Азопирамовая проба

Маточным раствором является азопирам,
который в холодильнике хранится 2 месяца,
вне холодильника – 1 месяц с момента
изготовления азопирама.

Рабочий раствор азопирама готовится
из равных объемов азопирама и 3% раствора
перекиси водорода перед применением.

Срок годности рабочего раствора азопирама
40 мин.

Рабочий раствор азопирама проверяется
на пригодность не реже одного раза в
неделю: на предметное стекло с мазком
крови капается 2-3 капли рабочего раствора
азопирама, если в течение одной минуты
появилось сине-фиолетовое окрашивание,
раствор годен к применению.

Техника проведения пробы

Лоток выстилается белой салфеткой, на
которую кладется 3-5 шт. инструментов.
Инструменты должны быть разной
конструкции. Раствор капается на рабочие
поверхности, трудно отмываемые части
инструмента.

В инструменты, имеющие полости или
каналы, раствор набирается, а на плоские
– капается из пипетки 2-3 капли раствора
и сразу засекается время.

Если в течение одной минуты появилось
сине-фиолетовое окрашивание 0 реакция
на кровь положительная; бурое – на хлор
и ржавчину, розовое – на моющие средства.

Результаты азопирамовой пробы заносятся
в журнал.

Журнал учета качества предстерилизационной
обработки

Начат «___»___20__г. Окончен «__»____20__г.

Результаты выборочного химического
контроля

обработанных изделий

В случае положительной пробы на кровь,
моющие средства, всю группу контролируемых
изделий, из которой отбирали контроль,
подвергаются очистке.

Фенолфталеиновая проба

Рабочий раствор – 1% спиртовой раствор
фенолфталеина. В холодильнике хранится
один месяц, вне холодильника – 15 дней.

Техника постановки пробы как и
азопирамовая.

Если появилось в течение одной минуты
розовое окрашивание, реакция на моющие
средства положительная.

Проба суданом-3

Проба ставится только на инструменты,
испачканные масляными препаратами.

Рабочий раствор – судан-3. В холодильнике
хранится 6 мес., вне холодильника – 3
мес.

Техника постановки пробы.

Инструмент протирается салфеткой,
смоченной суданом-3, через 10 сек. Инструмент
ополаскивается проточной водой, обильной
струей. Если на инструменте появились
желтые пятна или подтеки, реакция на
масляные препараты положительная. При
отрицательных пробах растворы не меняют
свою окраску.

При положительных пробах вся партия
инструментов проходит повторную
обработку.

Инструменты, использованные для контроля,
при положительных и отрицательных
пробах подвергаются повторной обработке.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]

• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #

АЗОПИРАМ ОЧИСТКА

КУПИТЬ

Составлена на базе извлечений из методических указаний МЗ СССР «Контроль качества предстерилизиционной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам», утвержденных начальником главного управления карантинных инфекций МЗ СССР М.Н. Наркевичем 26.05.1988 г. № 28-6,13.

ИНСТРУКЦИЯ

по использованию реактива азопирам

для контроля качества предстерилизационной очистки изделий

1.2 Проба с азопирамом по чувствительности не уступает бензидиновой и в 10 раз превышает амидопириновую.

1.3 С введением данных указаний бензидиновая и ортололудиновая пробы отменяются.

1.4 Реактив азопирам используется для выявления скрытых следов крови, которые могли остаться на подготовленных к стерилизации медицинских изделиях в результате недостаточно тщательной предстерилизационной очистки. Согласно ГОСТ 42-21-2-85 стерилизации должны подвергаться изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами и отдельные виды медицинских инструментов, которые, в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения (п. 3.1).

1.5 Контроль предстерилизационной очистки проводят санитарно-эпидимиологические и дезинфекционные станции 1 раз в квартал. Самоконтроль в лечебно-профилактических учреждениях проводиться не реже 1 раза в неделю, организуется и контролируется старшей медицинской сестрой (акушеркой) отделения.

ПРИГОТОВЛЕНИЕ ИСХОДНОГО РАСТВОРА

1. Сухие компоненты — порошок «А» (большая упаковка) и порошок «СА» (маленькая упаковка) смешивают в сухой посуде.

2. Смесь заливают 95% этиловым спиртом (растворять только в спирте ректификате) до объема 100 мл и тщательно размешивают стеклянной палочкой до полного растворения ингредиентов.

3. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4° С (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре (+18–23° С) не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ РАБОЧЕГО РАСТВОРА

Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества исходного раствора и 3% перекиси водорода. 

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяется в случае необходимости; 2–3 капли этого раствора наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневое, реактив пригоден к употреблению, если в течение 1 минуты окрашивание не появляется — реактивом пользоваться нельзя. 

МЕТОДИКА ПОСТАНОВКИ РЕАКЦИИ

Рабочим раствором обрабатывают исследуемые изделия: протирают тампонами, смоченными реактивом или наносят несколько капель реактива на исследуемые изделия с помощью пипетки. В шприцы наливают 3–4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 0,5–1,0 минуты, после чего реактив вытесняют на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров или других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь полых изделий с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5–1,0 минуту, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

Контролю подвергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3–5 единиц. 

ИНДИКАЦИЯ ЗАГРЯЗНЕНИЯ

В присутствии крови немедленно или не позднее чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется окрашивание, вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд переходящее в розово-сиреневое или буроватое. Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 минуту после обработки исследуемых предметов, не учитывается. Азопирам выявляет наличие гемоглобина, перокидаз растительного происхождения, стиральных порошков с отбеливателем, хромовой смеси для обработки (растительных остатков, окислителей (хлорамина, хлорной извести, стиральных порошков с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и т.п.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины и хлорсодержащих окислителей. В остальных случаях окрашивание розово-сиреневое. 

ОСОБЕННОСТИ РЕАКЦИИ

Исследуемые изделия должны иметь комнатную температуру (желательно не выше +25° С). Нельзя подвергать проверке горячие изделия, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т.п.). Рабочий раствор должен быть использован в течение 1–2 часов. При длительном стоянии появляется спонтанное розовое окрашивание раствора. Такой раствор следует заменить свежим. При температуре выше +25° С рабочий раствор розовеет быстрее, его можно использовать 30–40 минут.

После проверки, независимо от ее результатов, следует удалить остатки азопирами с исследованных изделий, обмыв их водой или протерев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повторить предстерилизационную очистку этих изделий.

МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ

Реактивы, входящие в азопирам и его растворы, должны храниться в плотно закрывающихся емкостях отдельно от пищевых продуктов, лекарственных препаратов, дезинфицирующих средств, крепких кислот и щелочей. Приготовление раствора производится на лабораторном столе в хорошо вентилируемом помещении, желательно в вытяжном шкафу; следует избегать запыления реактивов. При приготовлении 3% перекиси водорода следует пользоваться резиновыми перчатками. При попадании на кожу азопирама или веществ, входящих в его состав, а также перекиси водорода их следует удалить чистой ватой или марлей и омыть место контакта водой.

При попадании на кожу азопирама или веществ, входящих в его состав, а также перекиси водорода их следует удалить чистой ватой или марлей и обмыть место контакта водой. При попадании реактивов на слизистые, после немедленного удаления веществ, необходимо место контакта обильно промыть большим количеством холодной воды. Рассыпанные или пролитые реактивы удаляют, а место, где они находились, промывают тампонами, смоченные водой или спиртом.

Азопирам горюч, т.к. в его состав входит спирт. Нельзя допускать контакт азопирама с открытым огнем и раскаленными поверхностями нагревательных приборов.

При приготовлении использовании азопирама следует руководствоваться правилами техники безопасности, изложенными в руководствах: Справочник по охране труда работников здравоохранения. Составитель Валяева К.Н., Медицина, 1975, с.124—144, 155–159, 165–170; Вредные вещества в промышленности. Ред. Н.В. Лазарев, Э.Н. Левина, изд. 7-е, «Химия», 1976, т.2, с.281—283. 

СУХИЕ КОМПОНЕНТЫ ПРОИЗВОДЯТСЯ ПОД КОНТРОЛЕМ АВТОРОВ АЗОПИРАМА (А.С., СССР, № 885881) И ОРГАНИЗАЦИЙ-РАЗРАБОТЧИКОВ МЕТОДИЧЕСКИХ УКАЗАНИЙ И СООТВЕТСТВУЮТ ТРЕБОВАНИЯМ МЕТОДИЧЕСКИХ УКАЗАНИЙ (ГОСТ 5822-78 и ГОС.ФАРМАКОПЕЕ СССР ДЛЯ ПРЕПАРАТОВ СТ.45).

СУХИЕ РЕАКТИВЫ ХРАНИТЬ В СУХОМ И ЗАЩИЩЕННОМ ОТ СВЕТА МЕСТЕ. 

СТАБИЛИЗАЦИЯ ЖИДКОГО РАСТВОРА

Для стабилизации спиртового раствора порошков «А» и «СА» в него добавляется стабилизатор —- раствор порошка «С» в 10 мл дистиллированной воды. Стабилизированный раствор хранится в 2 раза дольше нестабилизированного. Стабилизированный раствор используется также как и нестабилизированный (т.е. перед применением смешивается с 3% перекисью водорода). К концу первого часа рабочий раствор может приобрести слабое зеленоватое окрашивание, не меняющее чувствительности рабочего раствора.

По вопросам, касающимся приобретения наборов и их качества, просим обращаться по адресу: 105173, г. Москва, ул. Западная, д. 2, стр. 1, ООО «Агат—Мед». Телефон для справок: (495) 777-41-92.

Назад к списку инструкций

В современных условиях высокого уровня инфицированности населения возбудителями гемоконтактных инфекций особенно актуальной является проблема обеспечения безопасности пациентов и персонала лечебно-профилактических организаций. Медицинская помощь сопряжена с необходимостью проведения многочисленных инвазивных манипуляций, при этом технологии не всегда позволяют использовать одноразовый медицинский инструментарий.

Как известно, инфицированные инструменты и материалы являются приоритетными факторами передачи гемоконтактных инфекций. Снижение риска заражения достигается применением одноразовых расходных материалов, а также путем трехступенчатой обработки медицинских изделий многоразового использования (дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация).

Наиболее критичным этапом обработки является предстерилизационная очистка, предусматривающая непосредственный контакт персонала с изделием. Именно на этом этапе довольно часто возникают аварийные ситуации (уколы, порезы), которыми нередко пренебрегают, поэтому не принимают экстренных мер профилактики. Однако инструментарий, прошедший только один этап обработки — дезинфекцию, не является биологически безопасным. Докажем это утверждение, перечислив типичные ошибки, допускаемые при дезинфекции:

•использование неразрешенных к применению средств и методов дезинфекции (на средство не оформлена необходимая разрешительная документация либо оно не может использоваться в лечебно-профилактических организациях, является фальсификатом и др.);

•нарушение условий хранения и транспортировки дезинфекционных средств (несоблюдение температурного режима хранения, воздействие прямых солнечных лучей, истекший срок годности исходного препарата и др.);

•неправильный выбор средства дезинфекции (не предназначено для уничтожения возбудителей вирусных гепатитов В, С и ВИЧ);

•неправильно выбранный режим дезинфекции (не обеспечивает гибель возбудителей гемоконтактных инфекций);

•некорректно проведенная дезинфекция (при изготовлении раствора дезинфектанта допущена ошибка в расчете концентрации, не выдержано время экспозиции, истек срок годности рабочего раствора и др.).

Наличие одной или нескольких ошибок сводит качество дезинфекции практически к нулю, как следствие, на этапе предстерилизационной очистки персонал имеет дело с опасным в биологическом плане инструментарием.

Кроме того, риск заражения персонала на втором этапе обработки инструментария обусловлен следующими факторами:

•непосредственный контакт персонала с медицинскими изделиями. В большей степени это относится к очистке вручную, однако и при механизации процесса персонал контактирует с изделиями при их перекладывании и сортировке;

•пренебрежение средствами индивидуальной защиты, в первую очередь перчатками.

Еще одна проблема связана с недостаточной информированностью персонала. Большинство современных средств дезинфекции содержат моющий компонент и предназначаются для проведения дезинфекции, совмещенной с предстерилизационной очисткой. Однако это не значит, что при погружении в раствор такого средства изделие одновременно проходит два этапа обработки. По окончании времени дезинфекции обязательно должна быть проведена очистка каждого изделия ручным или механизированным способом. Ручной способ подразумевает обработку каждого изделия в моющем растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 0,5–1 минуты. Механизированная очистка осуществляется с использованием специального оборудования, разрешенного к применению на территории Российской Федерации, имеющего сертификат соответствия и инструкцию по эксплуатации.

В чем же заключается суть совмещения дезинфекции с предстерилизационной очисткой? Ответ прост: между двумя этапами не требуется смена раствора дезинфектанта, содержащего моющий компонент. Иными словами, предстерилизацияонная очистка изделий осуществляется в том же растворе, в котором проводилась их дезинфекция. Все это, как правило, отражается в инструкции по применению средств дезинфекции, однако на практике ошибки в совмещении двух этапов обработки все же встречаются.

На схемах 1, 2, 3 представлены этапы предстерилизационной очистки, осуществляемой ручным способом, а также совмещенной с дезинфекцией.

Схема 1. Этапы проведения предстерилизационной очистки ручным способом[3]

Схема 2. Этапы проведения предстерилизационной очистки, совмещенной с дезинфекцией, ручным способом

Схема 3. Этапы проведения предстерилизационной очистки, совмещенной с дезинфекцией, механизированным способом

Наиболее перспективной является предстерилизационная очистка механизированным способом, среди преимуществ которой:

•сокращение тактильного контакта рук медицинского персонала с обрабатываемым инструментарием (биологическая безопасность персонала);

•сокращение времени обработки большого объема медицинских изделий (экономическая эффективность);

•предотвращение повреждения дорогостоящих изделий и инструментов, увеличение срока их службы (экономическая эффективность);

•значительное улучшение качества очистки медицинских инструментов и изделий сложной конфигурации (биологическая безопасность пациента).

В настоящее время на территории Российской Федерации зарегистрировано два существенно отличающихся друг от друга типа оборудования для предстерилизационной очистки. Первый основан на применении ультразвука, второй представлен так называемыми термодезинфекторами, в которых дезинфекция осуществляется термическим методом, а предстерилизационная очистка производится с использованием моющих средств, как правило, не содержащих дезинфекционного компонента. Преимуществом использования второго типа оборудования является обеспечение полного цикла дезинфекционно-предстерилизационных мероприятий, поскольку термодезинфектор последовательно производит дезинфекцию, очистку, ополаскивание и сушку изделий. От персонала лишь требуется правильно осуществить загрузку и извлечение инструментария.

Важный момент — выбор средств для предстерилизационной очистки. Современный рынок предлагает нам два принципиально разных подхода. Первый предполагает использование моющих средств на основе поверхностно-активных веществ (ПАВ), второй — на основе ферментов. Препараты обеих групп зарегистрированы на российском рынке. Наиболее широкое применение нашли средства для предстерилизационной очистки на основе ПАВ, обладающие высокими моющими свойствами. К недостаткам таких средств относятся:

•высокое пенообразование (при использовании механизированного способа предстерилизационной очистки этот фактор может быть критичным ввиду несовместимости оборудования с моющим средством);

•образование пленки на поверхности обрабатываемых изделий, что требует тщательного смывания препарата;

•достижение максимального моющего эффекта возможно лишь при определенной заданной температуре, что обуславливает необходимость поддержания температуры раствора при проведении предстерилизационной очистки.

Препараты на основе ферментов содержат бактериальные протеазы, которые способны разрушать не только клеточные стенки бактерий и белковые оболочки вирусов, но и биопленки. При этом такие моющие средства, как правило, активны при комнатной температуре и обладают низким пенообразованием. Широкое применение данных препаратов ограничивает более высокая стоимость по сравнению со средствами на основе ПАВ.

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения осуществляется посредством постановки азопирамовой (амидопириновой) и фенолфталеиновой проб. Наличие остаточных количеств крови оценивается с помощью азопирамовой или амидопириновой, моющих средств — фенолфталеиновой проб. Обратим внимание, что фенолфталеиновая проба работает только в щелочной среде и пригодна для контроля в том случае, если для предстерилизационной очистки использовалось моющее средство, pH которого более 8,5. Показатель pH, как правило, указывается в инструкции к каждому конкретному средству. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения является неотъемлемой частью системы производственного контроля, действующей в лечебно-профилактической организации. Документом, доказывающим факт проведения такого контроля, является журнал учета качества предстерилизационной обработки .

Таким образом, от правильно организованной предстерилизационной обработки многоразового инструментария зависит биологическая безопасность как пациентов, так и персонала клиники. Повышению уровня безопасности способствует внедрение в практику новых средств, методов и технологий, которые существенно улучшают качество обработки изделий и сокращают контакт персонала с потенциально опасными изделиями. Контрольные мероприятия необходимо рассматривать как элемент системы менеджмента качества медицинской помощи, а не как рутинный процесс, которым можно пренебречь.