Сложный процесс обработки хирургического инструментария традиционно делится на три этапа: дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация. Сразу после использования инструменты проходят дезинфекцию, которая направлена на профилактику заражения медицинского персонала и пациентов.
Наиболее распространенными являются физический (обработка сухим горячим воздухом или перегретым паром) и химический (погружение в дезинфицирующие растворы) методы дезинфекции. Химическая дезинфекция и предстерилизационная очистка, как правило, объединяются в один этап обработки. Среди методов различают: ручную, машинную и ультразвуковую очистку.
Ручная дезинфекционная очистка
При проведении механической (ручной) мойки хирургических инструментов рекомендуется придерживаться следующих правил:
- Все процедуры дезинфекции и обработки проводятся медперсоналом обязательно в перчатках достаточной толщины, халатах, масках, водонепроницаемых фартуках, защитных очках, с острыми предметами обращаются осторожно.
- При приготовлении растворов следует соблюдать указания изготовителя по концентрации, температуре и времени воздействия.
- В случае применения порошковых средств в рабочем растворе — следить за полным их растворением.
- Использовать мягкие салфетки без ворса, пластиковые щетки или моющие пистолеты. Не применять: металлические щетки, крупнозернистые абразивные вещества, чрезмерное надавливание.
- Инструменты укладывать аккуратно, не допуская переполнения лотков.
- После ручной дезинфицирующей очистки хирургические инструменты промывают проточной дистиллированной водой от 3 до 10 мин (в зависимости от применяемого средства), удаляя остатки загрязнений, и высушивают.
Машинная очистка и дезинфекция
Механизированная мойка производится в специализированных моющих машинах, где максимально обеспечивается стандартизация процессов очистки и дезинфекции. Перед загрузкой в машину инструменты предварительно обрабатываются вручную или в ультразвуковой ванне и тщательно промываются с удалением загрязняющих остатков. При машинной обработке используются термические и химико-термические методы дезинфекции. Внимательное изучение инструкций по эксплуатации моющих машин и рекомендаций изготовителей хирургических инструментов, позволяют избежать некачественной обработки и порчи инструментария.
Ультразвуковая очистка
Эффективным механическим методом, дополняющим ручную обработку ХИ из нержавеющей стали и твердого пластика, является ультразвуковая очистка. Ультразвуковая предстерилизационная очистка (УЗО) выполняется в специальной камере, заполненной моющим раствором, через которую пропускают ультразвук. Используется для:
- удаления приставших загрязнений;
- ускоренной дезинфекции и одновременной интенсивной очистки.
Правила, которые следует учитывать хирургической медсестре при ультразвуковой мойке инструментов, сходны с правилами ручной очистки и дезинфекции.
Особенности обработки отдельных групп инструментов
Некоторые группы хирургических инструментов требуют выполнения специальных правил обработки.
| Группы инструментов | Ручная | Машинная | Ультразвуковая |
|---|---|---|---|
| Микрохирургические | Ручная Требуется очень бережное обращение | МашиннаяТщательно закреплять, применяя специальные держатели | УльтразвуковаяЗакреплять в специальных держателях |
| Стоматологические | РучнаяПредварительно очищать от присохших остатков, проверять совместимость с моющими средствами | МашиннаяТщательно закреплять, применяя специальные держатели, сверла, фрезы и шлифовальные головки дополнительно обрабатывать ультразвуком | УльтразвуковаяХим ср-ва использовать в соответствии с рекомендациями изготовителя |
| Механические устройства | РучнаяНе погружать в моечную ванну, не допускать проникновения воды в соединительные муфты и детали | МашиннаяОбрабатываются только съемные части при разрешении изготовителя | УльтразвуковаяОбработке не подлежат |
| Эндоскопы и малоинвазивные | РучнаяПолости и каналы промывать специальными щетками по всей длине | МашиннаяПредварительно разобрать, вынуть уплотнители, открыть или снять краны, закрепить | УльтразвуковаяОбрабатываются только рекомендованные изготовителем |
| Гибкие эндоскопы | РучнаяПеред обработкой снять клапаны и колпачки, после обработки- более длительно промывать и сушить слегка теплым воздухом | МашиннаяТолько в специальных аппаратах | УльтразвуковаяОбработке не подлежат |
Заключительная дезинфекция
После очистки, дезинфекции и высушивания инструментов проводится стерилизация — обезвреживание оставшихся микроорганизмов. Основной способ стерилизации — автоклавирование. Он применяется, в основном, к хирургическим инструментам из нержавеющей стали. Инструменты, которые не могут подвергаться обычной стерилизации или стерилизация которых не требуется, подлежат заключительной дезинфекции. При ручном способе используется химический метод, при машинном — химический и химико-термический с промежуточной очисткой. После проведения процедуры инструменты должны быть тщательно промыты деминерализованной стерильной водой и высушены. Заключительной дезинфекции, как правило, подвергаются: гибкие эндоскопы, эластичные инструменты из пластмассы, резины, латекса.
Стерилизация хирургических инструментов
27 февраля 2019
Обработка всех медицинских инструментов должна проводиться согласно действующим санитарно-гигиеническим стандартам, где первый этап – предстерилизационная обработка, а второй – стерилизация. Особое внимание уделяют обработке хирургического инструментария (шприцы, иглы, зажимы, ампутационные ножи, лапароскопы, цистоскопы и т.д.)
Что входит в предстерилизационную очистку?
- Обеззараживание (сразу же после хирургического вмешательства, все использованные инструменты погружаются в дез. раствор – 3% хлорамин на 30-40 мин или 6% р-р перекиси на 30 минут);
- Мытье (подразумевает погрузку приборов в особый щелочной раствор при температуре 50-60 градусов на 20 мин. После этого каждая деталь тщательно промывается щетками и ополаскивается проточной водой);
- Сушку (бывает двух типов: естественная или искусственная посредством использования горячего воздуха в сухожаровом шкафу.
Все использованные хирургические инструменты обеззараживаются в зависимости от степени инфицированности. Сегодня, когда угроза распространения СПИДа, гепатита и других тяжелых инфекционных заболеваний растет с каждым годом, требования к обработке хирургических инструментов значительно ужесточились. Правила предстерилизационной подготовки включают комплексные меры, которые гарантируют 100% уничтожение вируса иммунодефицита человека.
Внимание! Инструменты после гнойных заболеваний у людей с гепатитом или СПИДом должны проходить стерилизацию отдельно от других приборов.
Далее переходят к более агрессивной стерилизации. И тут для каждой категории инструментов существуют отдельные методы обработки. Металлические стерилизуют в специальным сухожаровом шкафу или автоклаве, режущие посредством сильнодействующих антисептиков или газовой стерилизации, резиновые – только при помощи автоклавирования или кипячения.
Как же стерилизуют оптические инструменты? Тут все гораздо сложнее, поскольку оптика требует максимально щадящей обработки. Идеальный способ – использование газовой стерилизации. Однако, не все медицинские учреждения могут позволить себе столь дорогостоящую технику, поэтому большинство ЛПУ применяют холодную стерилизацию с использованием этилового спирта, сайдекса или хлоргексидина.
← другие новости
Понятие стерилизация. Методы стерилизации. Нормативные документы, регламентирующие методы способы и режимы дезинфекции и стерилизации (Приказы МЗ СССР, МЗ РФ, методические рекомендации и т.д.)
Стерилизация – (от лат. Обеспложивание) – это полное уничтожение м/о и их спор путем воздействия как физических факторов, так и химических препаратов. Стерилизация проводится после дезинфекции ПСО и контроля качества ПСО. Стерилизация является важнейшим звеном, последним барьером профилактики ВБИ в ЛПУ. Она защищает пациента от любой инфекции.
Стерилизация. Методы стерилизации
Стерилизация – совокупность физических и химических способов полного освобождения объектов внешней среды от вегетативных и споровых форм микроорганизмов.
Различают следующие методы стерилизации:
- Физический (паровой, воздушный, инфракрасный).
- Химический (применение растворов химических средств, газовый, плазменный).
- Радиационный.
- Механический.
Паровой метод стерилизации стерилизующим агентом является водяной насыщенный пар. Метод используется для стерилизации инструментов, перчаток, шовного и перевязочного материалов, белья, питательных сред и лекарственных растворов, резиновых и силиконовых изделий. Стерилизация проводится в автоклаве:
Режим для термостабильных материалов (белье, мягкий материал, инструменты):
Режим для термолабильных материалов (резиновые или силиконовые дренажи, перчатки и др.):
|
 |
Воздушный метод стерилизации стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. Метод предназначен для стерилизации инструментов, лабораторной и аптечной посуды, а также изделий, которые не могут стерилизоваться паром (тальк, масло). Инструменты в воздушном стерилизаторе размещают в один слой открыто на лотках или упаковывают в бумагу (крафт-пакеты). Хранение стерильных изделий в воздушных стерилизаторах недопустимо. Стерилизация проводится в воздушных стерилизаторах:
|
 |
В стоматологических медицинских организациях (кабинетах) допускается применять гласперленовые стерилизаторы, в которых стерилизуют боры различного вида и другие мелкие инструменты при полном погружении их в среду нагретых стеклянных шариков. Не рекомендуется использовать данный метод для стерилизации рабочих частей более крупных стоматологических инструментов, которые невозможно полностью погрузить в среду нагретых стеклянных шариков.
Инфракрасный метод: используется инфракрасное излучение.Инфракрасным методом стерилизуют стоматологические и некоторые другие инструменты из металлов.
Химический метод стерилизации стерилизующим агентом является жидкое или газообразное химическое вещество:
- Жидкие: 1. 6% раствор перекиси водорода – 6 часов (при подогреве температуры раствора до 500С – 3 часа);
2. 1% (по надуксусной кислоте) раствор Дезоксона-1 – 45 минут;
3. 2% раствор глутарового альдегида – 6-10 часов.
- Газообразные: окись этилена, пары формальдегида, бромистый метил, газообразный пероксид водорода (плазма перекиси водорода).
При химическом методе стерилизации жидкими стерилянтами необходимо обязательное отмывание простерилизованного объекта от остатков стерилизующего вещества стерильной водой (не менее двух раз). После отмывания стерильные изделия выкладывают на стерильный стол или заворачивают в стерильную простынь и помещают в простерилизованный бикс, в котором простерилизованные изделия могут храниться до 3-х суток. К персоналу, проводящему стерилизацию, предъявляются высокие требования – он должен готовиться к стерилизации также как к работе в операционной: работа проводится в стерильном халате, бахилах, маске, стерильных перчатках.
Плазменный метод: используются стерилизующие средства на основе перекиси водорода в плазменных стерилизаторах. Стерилизуют хирургические, эндоскопические инструменты, эндоскопы, оптические устройства и приспособления, волоконные световодные кабели, зонды и датчики, электропроводные шнуры и кабели и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс, стекла и кремния.
Радиационный метод: стерилизующим агентом являются гамма- и бета-излучение. Данный способ стерилизации проводится только в заводских условиях, требует создания сложных и дорогостоящих систем защиты обслуживающего персонала от радиации.
Механические способы стерилизации предусматривают фильтрование жидкостей через мелкопористые фильтры, пропускание воздуха через бактерицидные фильтры, «промывание» какого-либо помещения (например, бокса) ламинарным потоком стерильного воздуха.
Сроки сохранения стерильности материалов
Сроки сохранения стерильности материалов зависит от метода стерилизации и материала упаковки.
| Срок хранения материалов, простерилизованных в двойной упаковке из бязи, пергаменте, бумаге (мешочной непропитанной и мешочной влагопрочной), в стерилизационной коробке, выложенной стерильной простыней (для изделий, стерилизованных растворами химических препаратов) равен 3 суткам, в стерилизационных коробках с фильтром – 20 суткам. |  |
 |
Для изделий, стерилизованных в полиэтиленовой упаковке, срок хранения материалов до 5 лет, в крафт-пакетах – от 20 суток до 2 месяцев, в комбинированных полимерных пакетах – от 6 месяцев до 1 года. |
Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках без упаковки, допускается извлекать для использования из стерилизационных коробок не более чем в течение 6 часов после их вскрытия.
Как исключение, одним из методов хранения простеризованных изделий медицинского назначения является использование ультрафиолетовых камер («Панмед» и др.), которые обеспечивают длительный срок хранения – от 3-х до 7 суток).
Внимание! Следует учитывать, что ультрафиолетовые лучи стерилизующим действием не обладают!
Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде, осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала согласно инструкции по его применению.
Внимание! Изделия, стерилизованные без упаковки, должны быть использованы непосредственно после стерилизации!
Пройдите по ссылке для прочтения дополнительного материала: https://pamsk.ru/information/obuchenie/fayly/instruktivno-metodicheskoe-posobie-dlya-praktikuyushchikh-meditsinskikh-sester-organizatsiya-sanitar#:~:text=Стерилизация%20–%20совокупность%20физических%20и,и%20предупреждения%20развития%20инфекционного%20процесса
В настоящее время для выполнения санитарно-противоэпидемического режима ЛПУ действуют следующие документы.
1. Санитарные правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, роддомов, др. лечебных стационаров (СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»), определяющие санитарное содержание различных помещений стационара, оборудования, инвентаря, личную гигиену пациентов и обслуживающего персонала.
2. Отраслевой стандарт 42-21-2-85, определяющий методы, средства и режим дезинфекцци и стерилизации изделий медицинского назначения (шприцев, игл, инструментария) – «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».
3. Приказ № 408 от 12.07.89 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране», где чётко указаны меры по профилактике профессионального заражения в процедурном кабинете.
4. Приказ № 720 от 31.07.78 г. «Об улучшении медицинской помощи больным гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».
5. Приказ № 916 от 04.08.83 г. «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц».
6. Методические рекомендации по повышению надёжности стерилизационных мероприятий в ЛПУ по системе «Чистый инструмент» (1994 г.) и некоторые другие инструкции и рекомендации.
7. Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации предметов медицинского назначения, утвержденные МЗ России 30 декабря 1998 г. № МУ-287-113.
8. Инструкция № 154.021.98 ИП по применению «Индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180» для контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.
9. Руководство Р3.1.683-98 по «Использованию ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях». МЗ России, М., 1998 г.
10. СанПин 2.1.7.2790-10 Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы/санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами.
За невыполнение данных приказов, инструкций и рекомендаций медперсонал несёт юридическую ответственность по статьям уголовного кодекса.
| № приказа, издавший орган | Год издания | Название приказа | |
| 288, МЗ СССР | 23.03.19. | «Об утверждении инструкции о санитарно-противоэпидемическом режиме больницы и о порядке осуществления органами и учреждениями санитарно -эпидемиологической службы государственного санитарного надзора за санитарным состоянием ЛПУ» | |
| 720, МЗ СССР | 31.07.1978. | «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничными инфекциями» | |
| СанПиН 2.1.3.2630-10 | 08.05.2010 | «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность» | |
| ОСТ 42-21-2-85 МЗ СССР, введен пр. №770 МЗ СССР | 01.01.1986. 10.06. | «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы» | |
| 408, МЗ СССР | 27.07.1989. | «Об усилении мероприятий по снижению заболеваний вирусными гепатитами в стране» | |
| 254, МЗ СССР | 03.09.1991. | «О развитии дезинфекционного дела в стране» | |
| 342, МЗ РФ | 26.11.1998. | «Об усилении мероприятий по профилактике эпидемического сыпного тифа и борьбе с педикулезом» | |
| 249, МЗ РФ | 09.08.1997. | «О номенклатуре специальностей среднего медицинского и фармацевтического персонала» | |
| 170, МЗ РФ | 16.08.1994. | «О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в РФ» | |
| 174-Д, МЗ РБ | 30.01.2012. | «Об экстренной профилактике заражения ВИЧ-инфекцией» | |
| СанПин 2.1.7.2790-10 | 09.12.2010 | «Санитарно- эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами» | |
| СП. 3.1.5.2826-10 | 11.01.2011 | Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика ВИЧ-инфекции» | |
| СП 1.3.2322-08 | 02.06.2009 | Санитарные правила и нормы«Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами» | |
| Приказ №259-Д МЗ РБ | 30.04.2003 | «О мероприятиях по предупреждению синдрома респираторного заболевания (SARS) в РБ». | |
| Приказ №60-Д МЗ РБ | 07.07.1996 | «О проведении медицинского освидетельствования на ВИЧ/СПИД». | |
| СП 3.1.2825-10 | 30.12.2010 | Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика вирусного гепатита А» | |
| Приказ №36 МЗ РФ | 03.02.1997 | «О совершенствовании мероприятий по профилактике дифтерии». | |
| Приказ №678-Д МЗ РБ | 19.10.2001 | «О состоянии готовности ЛПУ и центров ГСЭН к возникновению очагов ООИ». | |
| Приказ №139 МЗ СССР | 02.03.1989 | «О мероприятиях по снижению заболеваемости брюшным тифом и паратифом в стране». | |
| Приказ №475 МЗ СССР | 16.08.1989 | «О мерах по дальнейшему совершенствованию профилактики заболеваемости острыми кишечными инфекциями в стране». | |
| Инструкция МЗ СССР | 24.03.1989 | «По сбору, хранению и сдаче лома медицинских изделий однократного применения из пластических масс». | |
| М.У. 3.1. 2313-08 | 15.01.2008 | Методические указания «Требования к обезвреживанию, уничтожению и утилизации шприцев инъекционных, однократного применения». | |
| Приказ №302Н МЗ РФ | «О порядке проведения предварительных периодических медицинских осмотров». | ||
| Приказ №109 МЗ РФ | «Меры по профилактике туберкулеза в стране». | ||
| Приказ №65 МЗ РФ | 01.06.1999 | «О профилактических мед.осморах». |
Требования к стерилизующей аппаратуре. Контроль качества стерилизации.
Использование традиционных способов стерилизации (паровой, воздушный)
Обязательно к прочтению.
Промышленные методы стерилизации
Стерилизация позволяет обрабатывать термолабильные изделия одноразового пользования, шовный материал, оптические системы, лекарственные препараты.
Обязательные условия сохранения стерильности одноразовых изделий медицинского назначения:
• герметичность упаковки;
• целостность упаковки;
• срок годности.
Газовый метод стерилизации (низкотемпературная стерилизация)
Для низкотемпературной стерилизации используют этиленоксид. Газовая стерилизация подходит для большинства изделий медицинского назначения, чувствительных к воздействию температурного фактора и влаги: имплантируемых изделий, включая искусственные водители ритма, изделий из пластмассы (шприцы, капельные системы), резины (катетеры, перчатки), оптические системы. Такая стерилизация безопасна для персонала и окружающей среды, экономически оправдана.
Радиационный метод
Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов, биологических (вакцин, сывороток) и лекарственных препаратов. Стерилизующим агентом является у (гамма)- и |3 (бета)- излучения.
Контроль качества стерилизации
Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. За качеством стерилизации в лечебных учреждениях ведут тройной контроль стерильности — бактериологический, технический и химический.
Технический контроль проводят сотрудники ЦСО, осуществляющие наблюдение за показаниями приборов — манометра и термометра.
Бактериологический контроль— самый точный и строгий, но результат будет получен через несколько дней.В настоящее время для проведения бактериологического контроля используются биотесты, имеющие дозированное количество спор тест-культуры. Контроль эффективности стерилизации с помощью биотестов рекомендуется проводить 1 раз в 2 недели. В зарубежной практике принято применять биологическое тестирование не реже 1 раза в неделю.
Химический контроль осуществляют с помощью различных химических веществ, которые меняют свой цвет при определённом температурном режиме.
Повседневный текущий контроль осуществляют с помощью лент-индикаторов стерильности (ИС), предназначенных для контроля за соблюдением температурного и временного режимов стерилизации.
По окончании стерилизации цвет индикаторного слоя становится таким, как у прилагаемого эталона, или темнее. Если цвет индикатора светлее эталона, это указывает на неэффективность стерилизации.
Новейшие методики проведения стерилизации
Новые методы дезинфекции и стерилизации
Новые методы дезинфекции включают в себя постоянное антимикробное покрытие, которое может быть применено как к живым, так и к неживым объектам (Сурфацин), дезинфицирующие средства с уменьшенным временем экспозиции (Ортофтальальдегид), а также противомикробное средство, которое может быть применено к живым и неживым объектам (Оксигенированная вода).
Новые методы стерилизации включают процесс химической стерилизации эндоскопов с интегрируемой системой очистки (Endoclens), биологические индикаторы быстрого чтения для стерилизации окисью этилена (Attest) и стерилизация низкотемпературной плазмой перикиси водорода, которая имеет более короткий временной цикл и улучшенную эффективность (Sterrad 50).
Необходимость соответствующих процедур дезинфекции подчеркивается множеством вспышек инфекционных заболеваний в результате неправильного обеззараживания предметов ухода за больными. Поскольку не все подобные предметы подлежат обязательной стерилизации, медицинские учреждения самостоятельно определяют, когда нужно проводить уборку, дезинфекцию и стерилизацию, основываясь как на интенсивности использования таких предметов, так и на стоимости проведения подобных мероприятий (во многих случаях это является определяющим фактором). В статье мы рассмотрим новые методы дезинфекции и стерилизации
Рациональный подход к проведению дезинфекции и стерилизации
Более 35 лет назад американский ученый Эрл Х. Сполдинг разработал подход к дезинфекции и стерилизации оборудования и предметов ухода за больными, этот подход был ясен, логичен и рационален и использовался и дополнялся специалистами в сфере дезинфекции на протяжении уже долгого времени. Сполдинг был уверен в том, что частота проведения дезинфекции предмета должна напрямую зависеть от интенсивности его использования. Им были описаны три категории объектов дезинфекции «Критические», «Полукритические», «Некритические». Предметы, относящиеся в категорию «Критических» (те, что должны проникать в стерильные ткани или сосудистую систему пациента, или те через которые проходят потоки крови, имплантируемые устройства), должны быть стерильны в момент использования. «Полукритические» предметы (контактирующие со слизистыми оболочками, поврежденными участками кожи, к примеру эндоскопы, оборудование для дыхательной терапии, диафрагмы) требуют дезинфекцию высокого уровня (т.е. уничтожение всех микроорганизмов, исключая большое число бактериальных спор). Категория «Некритические» (судна, манжеты, прикроватные тумбочки и т.д.) требуют только дезинфекцию низкого уровня.
Ортофтальальдегид: Новое химическое средство стерилизации
Ортофтальальдегид – прозрачная, светло-синего цвета жидкость (pH 7.5), выпускается обычно в концентрации 0.55% по ДВ. Ортофтальальдегид показа отличную антимикробную активность в лабораторных исследованиях. К примеру, он показал гораздо более высокую антимикробную активность (5-log10 снижение численности колонии за 5 минут) в сравнении с глутаральдегидом. Среднее время для достижения 6-log10 снижения численности колонии бактерий M. Bovis, при использовании 0,21% Ортофтальальдегида составило 5 минут, в сравнении с 32 минутами, при использовании 1.5% раствора глутаральдегида. При тестировании активности препарата против широкого спектра микроорганизмов, глутаральдегид-резистентных бактерий и спор Bacillus subtilis, Ортофтальальдегид показал высокую активность против тестируемых бактерий, включая глутаральдегид-резистентные штаммы, но 0.5% раствор Ортофтальальдегида не показал спорацидной активности при экспозиции 270 минут. Увеличение pH c 6.5 до 8 увеличило спорацидную активность вещества. Ортофтальальдегид имеет несколько потенциальных преимуществ в сравнении с глутаральдегидом. Он не требует активации, не вызывает раздражения слизистых оболочек глаз и полостей носа, имеет высокую стабильность при уровне pH от 3 до 9, не требует мониторинга экспозиции и практически не имеет запаха. Как и глутаральдегид, ортофтальальдегид имеет хорошую совместимость с различными метериалами. Потенциальный минус вещества в том, что оно окрашивает белки в серый цвет (включая незащищенный участки кожи), эта проблема решается сопутствующим предупреждением об этом для персонала, пользующегося препаратом (т.е. использования средств защит, перчаток, очков и т.д.). Ограниченные клинические исследования показали, что в 100 случаях стерилизации эндоскопов ортофтальальдегидом с экспозицией 5 минут было достигнуто снижение популяции колоний бактерий более чем на 5-log10 и ортофтальальдегид был эффективен в течение 14-дневного цикла использования. По данным производителя при стерилизации автоматических репроцессоров эндоскопов действие ортофтальальдегида до снижения его эффективной концентрации (около 82 циклов использования) будет длиться дольше в сравнении с глутаральдегидом (до 40 циклов использования).
Сурфацин: Новое антимикробное действующее вещество
Передача некоторых возбудителей внутрибольничных заболеваний, главным образом, устойчивых к ванкомицину Enterococcus spp (VRE), метициллин-устойчивых Staphylococcus aureus, Clostridium difficile (MRSA) связана с заражением ими поверхностей. Передача заболеваний производится косвенным контактом персонала медучреждения с больными или зараженными поверхностями. Исследование проб с поверхностей в больничных палатах зараженных VRE дали положительный результат в 7-37% случаев. Молекулярный анализ штаммов, участвующих во вспышках заболеваний в ряде случаев продемонстрировал, что изоляты, полученные из окружающей среды были идентичны этим штаммам.
Резистентные к антибиотикам патогенны, такие как VRE и MRSA обладают схожей восприимчивостью к дезинфикантам, что и нерезистентные к антибиотикам штаммы. Однако, дезинфиканты, которые обычно используются, к примеру, фенолы или четвертично аммониевые соединения, хоть и эффективны при уничтожении таких патогенов, но не обладают остаточной активностью. Следовательно, после проведения дезинфекции поверхности могут быть заражены вторично достаточно быстро.
Сурфацин – новое, стойкое антимикробное действующее вещество, которое можно использовать как на живых, так и на неживых объектах. Он включает водонерасворимые интимикробные соединения (Иодид серебра) в составе покрытия для поверхностей (модифицированный полигексаметилен бигуанид), способный химически распознавать и взаимодействовать двуслойными липидами бактериальных клеточных мембран с помощью электростатического притяжения. Близкий контакт поверхностей с микробами приводит к передаче антибактериального компонента (серебро) напрямую от покрытия к микроорганизму. Микроорганизмы, контактирующие микроорганизмы накапливают серебро до того момента, пока необходимый уровень токсичности не будет достигнут; мертвые бактерии в конечном счета разрушаются и «открепляются» от поверхности. Количество серебра и количество микроорганизмов, контактирующих с обработанными поверхностями, определяет то, как долго покрытие будет эффективным.
Предварительные исследования показывают, что обработанные поверхности дают хороший эффект в уничтожении резистентных к антибиотикам бактерий, помещенных напрямую на различные поверхности с различным уровнями сложности 100 CFU/кв. см. на протяжении 13 дней. Антимикробная активность сохраниласть при сухой чистке и влажной чистке, с использованием четвертично аммониевых соединений. По данным производителя продемонстрировано удаление бактерий, грибов, дрожжей и вирусов при нанесении препарата на поверхности с уровнем сложности 106 СFU/мл. Устойчивая антимикробная активность была продемонстрирована на тестируемых микроорганизмах. При этом, время удаления микроорганизмов варьируется.
Новое действующее вещество может наноситься на поверхности методами погружения, протирания, орошения, без предварительной обработки этих поверхностей. Покрытие не подвергается фоторедукции, деградации и не приводит к изменению цвета обработанной поверхности при воздействии интенсивного ультрафиолетового излучения. Препарат сцепляется фактически с любыми материалами, он не отслаивается и не трескается. Обработанные поверхности, подвергнутые тесту, в ходе которого были очищены механически, сохранили свою антибактериальную активность. Окончательно обработанные поверхности оставались химически инертны и сохранили свою биоцидную активность после различных физических и химических воздействий, таких как температура (тестировалась температура от -20oС до +130oС), растворители (спирт), вещества с pH от 4 до 10, вещества с высокой ионной силой, стерилизация обычными методами (паром, оксидом этилена, гамма излучением). Покрытие содержащие малое количество иодида серебра (примерно 10 мкг/кв. см покрытой поверхности) и покрытые поверхности резистентны к образованию биопленки. Препарат не токсичен для млекопитающих.
Новый дезинфекант: Оксигенированная вода
Концепция электролиза соли для создания дезинфицирующего средства привлекательна тем, что основные материалы и электроэнергия дешевы, а конечный продукт – вода не загрязняет окружающую среду. Механизм действия не достаточно ясен, возможно он является разновидностью окисляющих препаратов. Основными действующими веществами являются хлорноватистая кислота в концентрации, с примерной концентрацией 144 мг/л и свободные радикалы хлора. Это дезинфицирующее средство производится путем пропускания физраствора через электроды с титановым покрытием при силе тока в 9 А. Получаемое вещество имеет pH 5.0 – 6.5 окислительно-восстановительный потенциал > 950 мВ. Оборудование для производства вещества может быть дорогим, так как такие параметры как pH и окислительно-востановительные потенциал должны тщательно отслеживаться. Вещество, как показано, является нетоксичными для биологических тканей. Хотя, как заявлено, препарат не окисляет и не повреждает эндоскопы, один из производителей эндоскопов аннулировал гарантию на свою продукцию в случае проведения дезинфекции оборудования оксигенированной водой.
Антибактериальная активность была исследована на примере бактерий, микробактерий, вирусов, грибов и спор. Последние исследовния показали, что вновьпроизведенная оксиенированная вода, дает очень быстрый эффект (менее чем за 2 минуты) при уничтожении 5-log10 колонии микроорганизмов (Mycobacterium tuberculosis, M. chelonae, poliovirus, HIV, MRSA, Escherichia coli, Candida albicans, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa) при отсутствии нагрузки по органическим загрязнениям. Необходимы дальнейшие исследования для определения, возможно ли использовать оксигенированную воду в качестве альтернативы другим дезинфекантам.
Режимы стерилизации и стерилизуемые изделия
Химическая стерилизация газами и растворами стерилянтов. Преимущества и недостатки.
Химические вещества используются для низкотемпературной стерилизации крупногабаритных предметов, а также термочувствительных материалов и оборудования, которые приходит в негодность при других методах стерилизации.
1. Газовый способприменяется для стерилизации крупногабаритных изделий, а также термолабильной медицинской аппаратуры и изделий из резины и пластмассы (эндоскопы и принадлежности к ним, диализаторы, катетеры).Используются химические соединения, обладающие безусловным спороцидным действием: окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила. При газовой стерилизации необходимо строго контролировать температуру, влажность, концентрацию стерилизующего газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматическим прохождением цикла.
Окись этилена используется для стерилизации объектов, чувствительных к температуре выше 600C. Окись этилена требует больше времени для стерилизации, чем при тепловой обработке. Обычно стерилизация окисью этилена проводится три часа при 30–600C и относительной влажности выше 30 %, концентрация газа при этом составляет 200–800 мг/л. Окись этилена легко воспламеняется.
Недостаток газовой стерилизации состоит в том, что газы могут вступать в химическую реакцию с материалами изделий, образуя токсичные и канцерогенные соединения. Поэтому после газовой стерилизации необходима дегазация — удаление со стерильных изделий остатков примененного средства в специальных аэраторах в течение 2 часов.
2.Жидкостная стерилизация растворами химических соединений (стерилянтами) применяется для стерилизации термолабильных медицинских инструментов, шовного материала, перчаток, оптических приборов, для хранения игл, инструментов.
Для проведения стерилизации рекомендованы средства, эффективные:
– при комнатной температуре: кислородсодержащие (6-90 % перекись водорода) и хлорсодержащие («Дезоксон–1»), 96 % этиловый спирт;
– при повышенной (до 40–500С) температуре: альдегиды (2% глутаральдегид, формальдегид, 0,55 % ортофталевый альдегид).
Стерилизация растворами химических соединений проводится в стерильных емкостях из стекла, металлов, термостойких пластмасс при полном погружении изделий в раствор при их свободной раскладке. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими.
35–90 % перекись водорода используется для стерилизации тепло- и температурочувствительных предметов, таких как жесткие эндоскопы. Самое большое преимущество перекиси водорода в качестве стерилянта – короткое время цикла: использование высоких концентраций перекиси водорода позволяет сократить время цикла стерилизации в современных установках до 28 минут. Перекись водорода может быть смешана с муравьиной кислоты в устройствах для стерилизации эндоскопов.
Однако не все объекты могут быть простерилизованы перекисью водорода и ее, проникающая способность ниже, чем у окиси этилена.
Альдегиды. Стерилизация формальдегидом проводится при температуре 60–800С в течении 60 минут. Многие вакцины стерилизуют формальдегидом. Формальдегид нельзя использовать для стерилизации оптических инструментов, эндоскопической аппаратуры, имплантатов.
0,2 % уксусная кислота используется для стерилизации инструментов.
0,01 % мертиолят натрия применяют для консервирования сывороток и жидких вакцин.
Антибиотикидобавляют в питательные среды при проведении вирусологических и иммунологических исследований.
Ионы серебра оказывают токсическое действие на некоторые бактерии, вирусы, водоросли и грибы благодаря олигодинамическому действию серебра. Однако тестирование и стандартизация этого метода стрилизации затруднительна.
Прионы обладают высокой резистентностью к химической стерилизации. Хлор и гидрокид натрия являются самыми эффективными в отношении прионов.
Недостатки стерилизации растворами химических соединений:
– к стерилизации необходимо готовиться так же, как к работе в операционной (стерильные халат, перчатки, бахилы, маска). Помещение должно быть оборудовано по типу бактериологического бокса;
– по окончании процесса необходима нейтрализация стерилизующего раствора стерильной дистиллированной водой;
– химические средства часто имеют короткий срок годности, вызывают коррозию инструментов; необходимо использовать вещества, химически совместимые с обрабатываемыми объектами;
– невозможность стерилизовать упакованные изделия;
– трудность контроля эффективности обработки;
– использование химических стерилянтов создает новые проблемы для безопасности труда: многие химические стериляны летучи и токсичны при контакте с кожей и слизистыми оболочками.
Поэтому растворы химических средств целесообразно использовать для стерилизации только в тех случаях, если применение других разрешенных методов стерилизации не представляется возможным.
Представляет интерес технология проведения стерилизации с использованием электрохимически активированных растворов (анолитов), вырабатываемых в специальных установках.
Преимущества электрохимически активированных растворов заключаются в том, что при наличии электроэнергии эти средства можно получать непосредственно в ЛПУ из питьевой воды и поваренной соли. «Нейтральный анолит» рекомендуется для стерилизации эндоскопов при комнатной температуре в течение 45 минут.
Недостатком этих средств является повреждающее действие на изделия из коррозионнонестойких металлов.
3. Плазменная стерилизация.Плазма — продукты распада пероксида водорода, образующиеся под воздействием электромагнитного излучения.
Плазменная стерилизация проводится при температуре 46-500С в течение 54–72 минут. Плазменные стерилизаторы могут быть использованы как при централизованной, так и при децентрализованной системе организации стерилизации. Самый малый плазменный стерилизатор занимает площадь 1 м2, объем его рабочей камеры 50 л.
Пероксид водорода распадается на нетоксичные продукты — воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на человека и окружающую среду.
Недостатки плазменной стерилизации:
– не подлежат стерилизации плазмой изделия из целлюлозы, полиамида, каучука, порошки, жидкости, хирургическое белье, перевязочный материал;
– малодоступный метод для широкого применения в ЛПУ из-за высокой стоимости оборудования. Использование плазменного метода наиболее приемлемо для стерилизации уникальных термолабильных изделий, имеющихся в единичном экземпляре и используемых неоднократно в течение рабочего дня. Для повседневной рутинной стерилизации стоит выбрать более доступный и дешевый метод;
– отсутствуют общепризнанные международные стандарты для данного метода.
4. Озоновая стерилизация. Озон является сильным окислителем. В течение многих лет озон используется на промышленных объектах для стерилизации питьевой воды и воздуха, а также для дезинфекции поверхностей. Недавно он был предложен для стерилизации в медицине. Стерилизация производится в специальных аппаратах озоно-воздушной смесью, продуцируемой генератором озона из атмосферного воздуха.
Недостатки озоновой стерилизации:
– окислительная способность озона ограничивает его спектр применения. При контакте с озоном могут повреждаться изделия из стали, меди, резины;
– озон токсичен, а имеющиеся сегодня аппараты не позволяют обезопасить персонал от контакта с ним;
– озон нестабилен;
– разработка режимов стерилизации применительно к конкретным изделиям оказалась проблематичной из-за ограничений в возможностях созданных образцов аппаратов.
Цель дезинфекции и стерилизации медицинских приспособлений – нейтрализация и уничтожение микроорганизмов. В стремлении сэкономить некоторые руководители клиник пренебрегают соблюдением санитарных норм. Результатом становится повышение риска распространения инфекционных болезней среди пациентов и персонала. Правильное обеззараживание медицинских изделий важно для поддержания здоровой атмосферы.
Оценка качества дезинфекции проводится путем смывов на выявление инфекционных возбудителей. Выполняется контроль 1% из партии изделий, прошедших обработку, но не менее трех штук. При отсутствии увеличения числа микроорганизмов очистка признается успешной.
Этапы обработки:
- Дезинфекция.
- Предстерилизационная очистка.
- Стерилизация.
Организация этих мероприятий проводится в соответствии с действующими нормативными актами.
Дезинфекционная обработка
Подразумевает ликвидацию условно-патогенной и патогенной флоры на предметах интерьера, поверхностях помещения, приспособлениях и расходных материалах, используемых в работе медицинского учреждения.
Задача дезинфекционной очистки – предупреждение и устранение накопления, репродукции и распространения болезнетворных микроорганизмов. Существует два вида обработки.
Профилактическая
Минимизирует риск инфицирования. Заключается процедура в проведении регулярной влажной уборки и еженедельной генеральной уборки помещений с высокими требованиями к стерильности.
Очаговая
Выполняется при подозрении и выявлении инфекционного очага.
Препараты для дезинфекции
Вид и концентрация препарата определяются возбудителем инфекции. Исходя из вида медицинского предмета, проводится дезинфекция высокого, промежуточного или низкого уровня.
Классификация обрабатываемых изделий:
- «Некритические». Находятся в контакте с неповрежденными кожными покровами.
- «Полукритические». Взаимодействуют с кожей и слизистыми оболочками, имеющими повреждения.
- «Критические». Погружаются в стерильные ткани, сосуды. Взаимодействуют с кровью и растворами для инъекций.
ДВУ применяется для «критических» изделий. Уничтожает микробы, но не бактериальные споры.
ДПУ провоцирует гибель вегетативных форм бактерий, грибов, вирусов. Не воздействует на споры бактерий. Устойчивость к методу демонстрируют мелкие нелипидные вирусы. Обрабатываются «полукритические» инструменты.
ДНУ применяется против вегетативных форм микроорганизмов. Обрабатывается часть «полукритических» и «некритических» изделий.
Методы дезинфекционной обработки:
- Механический. Мойка поверхностей, уборка пылесосом, вентиляция, проветривание.
- Физический. Кипячение, автоклав, сухожаровый шкаф.
- Химический. Погружение в дезраствор.
- Бактериологический. Применяются узкоспецифичные бактериофаги.
Классификация химических средств дезинфекции
Чаще всего применяются в клиниках. По химическому составу средства подразделяются на группы:
- Галогеносодержащие. Активное вещество – йод, бром или хлор.
- Кислородосодержащие. Действующий компонент – кислород, который выделяется из перекиси водорода, надкислот и перекисных соединений.
- ПАВы. Обеспечивают возможность совмещения дезинфекционной и предстерилизационной обработки.
- Гуанидсодержащие. Сложные органические соединения, воздействующие на широкий спектр микроорганизмов.
- Альдегидсодержащие. Янтарный и глутаровый альдегид. Оказывают бактерицидное, спороцидное, фунгицидное и вирулоцидное действие. Негативно действуют на макроорганизмы.
- Спирты. Предназначены для очищения оборудования и поверхностей.
- Фенолсодержащие. Амоцид и Амоцид 2000 — предназначены для дезинфекционной обработки очагов туберкулеза.
Воздушный метод стерилизации стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. Метод предназначен для стерилизации инструментов, лабораторной и аптечной посуды, а также изделий, которые не могут стерилизоваться паром (тальк, масло). Инструменты в воздушном стерилизаторе размещают в один слой открыто на лотках или упаковывают в бумагу (крафт-пакеты). Хранение стерильных изделий в воздушных стерилизаторах недопустимо. Стерилизация проводится в воздушных стерилизаторах:
|
|
В стоматологических медицинских организациях (кабинетах) допускается применять гласперленовые стерилизаторы, в которых стерилизуют боры различного вида и другие мелкие инструменты при полном погружении их в среду нагретых стеклянных шариков. Не рекомендуется использовать данный метод для стерилизации рабочих частей более крупных стоматологических инструментов, которые невозможно полностью погрузить в среду нагретых стеклянных шариков.
Инфракрасный метод: используется инфракрасное излучение.Инфракрасным методом стерилизуют стоматологические и некоторые другие инструменты из металлов.
Химический метод стерилизации стерилизующим агентом является жидкое или газообразное химическое вещество:
- Жидкие: 1. 6% раствор перекиси водорода – 6 часов (при подогреве температуры раствора до 500С – 3 часа);
2. 1% (по надуксусной кислоте) раствор Дезоксона-1 – 45 минут;
3. 2% раствор глутарового альдегида – 6-10 часов.
- Газообразные: окись этилена, пары формальдегида, бромистый метил, газообразный пероксид водорода (плазма перекиси водорода).
При химическом методе стерилизации жидкими стерилянтами необходимо обязательное отмывание простерилизованного объекта от остатков стерилизующего вещества стерильной водой (не менее двух раз). После отмывания стерильные изделия выкладывают на стерильный стол или заворачивают в стерильную простынь и помещают в простерилизованный бикс, в котором простерилизованные изделия могут храниться до 3-х суток. К персоналу, проводящему стерилизацию, предъявляются высокие требования – он должен готовиться к стерилизации также как к работе в операционной: работа проводится в стерильном халате, бахилах, маске, стерильных перчатках.
Плазменный метод: используются стерилизующие средства на основе перекиси водорода в плазменных стерилизаторах. Стерилизуют хирургические, эндоскопические инструменты, эндоскопы, оптические устройства и приспособления, волоконные световодные кабели, зонды и датчики, электропроводные шнуры и кабели и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс, стекла и кремния.
Радиационный метод: стерилизующим агентом являются гамма- и бета-излучение. Данный способ стерилизации проводится только в заводских условиях, требует создания сложных и дорогостоящих систем защиты обслуживающего персонала от радиации.
Механические способы стерилизации предусматривают фильтрование жидкостей через мелкопористые фильтры, пропускание воздуха через бактерицидные фильтры, «промывание» какого-либо помещения (например, бокса) ламинарным потоком стерильного воздуха.
Сроки сохранения стерильности материалов
Сроки сохранения стерильности материалов зависит от метода стерилизации и материала упаковки.
| Срок хранения материалов, простерилизованных в двойной упаковке из бязи, пергаменте, бумаге (мешочной непропитанной и мешочной влагопрочной), в стерилизационной коробке, выложенной стерильной простыней (для изделий, стерилизованных растворами химических препаратов) равен 3 суткам, в стерилизационных коробках с фильтром – 20 суткам. | |
|
Для изделий, стерилизованных в полиэтиленовой упаковке, срок хранения материалов до 5 лет, в крафт-пакетах – от 20 суток до 2 месяцев, в комбинированных полимерных пакетах – от 6 месяцев до 1 года. |
Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках без упаковки, допускается извлекать для использования из стерилизационных коробок не более чем в течение 6 часов после их вскрытия.
Как исключение, одним из методов хранения простеризованных изделий медицинского назначения является использование ультрафиолетовых камер («Панмед» и др.), которые обеспечивают длительный срок хранения – от 3-х до 7 суток).
Внимание! Следует учитывать, что ультрафиолетовые лучи стерилизующим действием не обладают!
Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде, осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала согласно инструкции по его применению.
Внимание! Изделия, стерилизованные без упаковки, должны быть использованы непосредственно после стерилизации!
Пройдите по ссылке для прочтения дополнительного материала: https://pamsk.ru/information/obuchenie/fayly/instruktivno-metodicheskoe-posobie-dlya-praktikuyushchikh-meditsinskikh-sester-organizatsiya-sanitar#:~:text=Стерилизация%20–%20совокупность%20физических%20и,и%20предупреждения%20развития%20инфекционного%20процесса
В настоящее время для выполнения санитарно-противоэпидемического режима ЛПУ действуют следующие документы.
1. Санитарные правила устройства, оборудования и эксплуатации больниц, роддомов, др. лечебных стационаров (СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»), определяющие санитарное содержание различных помещений стационара, оборудования, инвентаря, личную гигиену пациентов и обслуживающего персонала.
2. Отраслевой стандарт 42-21-2-85, определяющий методы, средства и режим дезинфекцци и стерилизации изделий медицинского назначения (шприцев, игл, инструментария) – «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».
3. Приказ № 408 от 12.07.89 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране», где чётко указаны меры по профилактике профессионального заражения в процедурном кабинете.
4. Приказ № 720 от 31.07.78 г. «Об улучшении медицинской помощи больным гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».
5. Приказ № 916 от 04.08.83 г. «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц».
6. Методические рекомендации по повышению надёжности стерилизационных мероприятий в ЛПУ по системе «Чистый инструмент» (1994 г.) и некоторые другие инструкции и рекомендации.
7. Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации предметов медицинского назначения, утвержденные МЗ России 30 декабря 1998 г. № МУ-287-113.
8. Инструкция № 154.021.98 ИП по применению «Индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180» для контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.
9. Руководство Р3.1.683-98 по «Использованию ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях». МЗ России, М., 1998 г.
10. СанПин 2.1.7.2790-10 Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы/санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами.
За невыполнение данных приказов, инструкций и рекомендаций медперсонал несёт юридическую ответственность по статьям уголовного кодекса.
| № приказа, издавший орган | Год издания | Название приказа | |
| 288, МЗ СССР | 23.03.19. | «Об утверждении инструкции о санитарно-противоэпидемическом режиме больницы и о порядке осуществления органами и учреждениями санитарно -эпидемиологической службы государственного санитарного надзора за санитарным состоянием ЛПУ» | |
| 720, МЗ СССР | 31.07.1978. | «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничными инфекциями» | |
| СанПиН 2.1.3.2630-10 | 08.05.2010 | «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность» | |
| ОСТ 42-21-2-85 МЗ СССР, введен пр. №770 МЗ СССР | 01.01.1986. 10.06. | «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы» | |
| 408, МЗ СССР | 27.07.1989. | «Об усилении мероприятий по снижению заболеваний вирусными гепатитами в стране» | |
| 254, МЗ СССР | 03.09.1991. | «О развитии дезинфекционного дела в стране» | |
| 342, МЗ РФ | 26.11.1998. | «Об усилении мероприятий по профилактике эпидемического сыпного тифа и борьбе с педикулезом» | |
| 249, МЗ РФ | 09.08.1997. | «О номенклатуре специальностей среднего медицинского и фармацевтического персонала» | |
| 170, МЗ РФ | 16.08.1994. | «О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в РФ» | |
| 174-Д, МЗ РБ | 30.01.2012. | «Об экстренной профилактике заражения ВИЧ-инфекцией» | |
| СанПин 2.1.7.2790-10 | 09.12.2010 | «Санитарно- эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами» | |
| СП. 3.1.5.2826-10 | 11.01.2011 | Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика ВИЧ-инфекции» | |
| СП 1.3.2322-08 | 02.06.2009 | Санитарные правила и нормы«Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами» | |
| Приказ №259-Д МЗ РБ | 30.04.2003 | «О мероприятиях по предупреждению синдрома респираторного заболевания (SARS) в РБ». | |
| Приказ №60-Д МЗ РБ | 07.07.1996 | «О проведении медицинского освидетельствования на ВИЧ/СПИД». | |
| СП 3.1.2825-10 | 30.12.2010 | Санитарно-эпидемиологические правила «Профилактика вирусного гепатита А» | |
| Приказ №36 МЗ РФ | 03.02.1997 | «О совершенствовании мероприятий по профилактике дифтерии». | |
| Приказ №678-Д МЗ РБ | 19.10.2001 | «О состоянии готовности ЛПУ и центров ГСЭН к возникновению очагов ООИ». | |
| Приказ №139 МЗ СССР | 02.03.1989 | «О мероприятиях по снижению заболеваемости брюшным тифом и паратифом в стране». | |
| Приказ №475 МЗ СССР | 16.08.1989 | «О мерах по дальнейшему совершенствованию профилактики заболеваемости острыми кишечными инфекциями в стране». | |
| Инструкция МЗ СССР | 24.03.1989 | «По сбору, хранению и сдаче лома медицинских изделий однократного применения из пластических масс». | |
| М.У. 3.1. 2313-08 | 15.01.2008 | Методические указания «Требования к обезвреживанию, уничтожению и утилизации шприцев инъекционных, однократного применения». | |
| Приказ №302Н МЗ РФ | «О порядке проведения предварительных периодических медицинских осмотров». | ||
| Приказ №109 МЗ РФ | «Меры по профилактике туберкулеза в стране». | ||
| Приказ №65 МЗ РФ | 01.06.1999 | «О профилактических мед.осморах». |
Требования к стерилизующей аппаратуре. Контроль качества стерилизации.
Использование традиционных способов стерилизации (паровой, воздушный)
Обязательно к прочтению.
Промышленные методы стерилизации
Стерилизация позволяет обрабатывать термолабильные изделия одноразового пользования, шовный материал, оптические системы, лекарственные препараты.
Обязательные условия сохранения стерильности одноразовых изделий медицинского назначения:
• герметичность упаковки;
• целостность упаковки;
• срок годности.
Газовый метод стерилизации (низкотемпературная стерилизация)
Для низкотемпературной стерилизации используют этиленоксид. Газовая стерилизация подходит для большинства изделий медицинского назначения, чувствительных к воздействию температурного фактора и влаги: имплантируемых изделий, включая искусственные водители ритма, изделий из пластмассы (шприцы, капельные системы), резины (катетеры, перчатки), оптические системы. Такая стерилизация безопасна для персонала и окружающей среды, экономически оправдана.
Радиационный метод
Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов, биологических (вакцин, сывороток) и лекарственных препаратов. Стерилизующим агентом является у (гамма)- и |3 (бета)- излучения.
Контроль качества стерилизации
Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в ЛПУ. За качеством стерилизации в лечебных учреждениях ведут тройной контроль стерильности — бактериологический, технический и химический.
Технический контроль проводят сотрудники ЦСО, осуществляющие наблюдение за показаниями приборов — манометра и термометра.
Бактериологический контроль— самый точный и строгий, но результат будет получен через несколько дней.В настоящее время для проведения бактериологического контроля используются биотесты, имеющие дозированное количество спор тест-культуры. Контроль эффективности стерилизации с помощью биотестов рекомендуется проводить 1 раз в 2 недели. В зарубежной практике принято применять биологическое тестирование не реже 1 раза в неделю.
Химический контроль осуществляют с помощью различных химических веществ, которые меняют свой цвет при определённом температурном режиме.
Повседневный текущий контроль осуществляют с помощью лент-индикаторов стерильности (ИС), предназначенных для контроля за соблюдением температурного и временного режимов стерилизации.
По окончании стерилизации цвет индикаторного слоя становится таким, как у прилагаемого эталона, или темнее. Если цвет индикатора светлее эталона, это указывает на неэффективность стерилизации.
Новейшие методики проведения стерилизации
Новые методы дезинфекции и стерилизации
Новые методы дезинфекции включают в себя постоянное антимикробное покрытие, которое может быть применено как к живым, так и к неживым объектам (Сурфацин), дезинфицирующие средства с уменьшенным временем экспозиции (Ортофтальальдегид), а также противомикробное средство, которое может быть применено к живым и неживым объектам (Оксигенированная вода).
Новые методы стерилизации включают процесс химической стерилизации эндоскопов с интегрируемой системой очистки (Endoclens), биологические индикаторы быстрого чтения для стерилизации окисью этилена (Attest) и стерилизация низкотемпературной плазмой перикиси водорода, которая имеет более короткий временной цикл и улучшенную эффективность (Sterrad 50).
Необходимость соответствующих процедур дезинфекции подчеркивается множеством вспышек инфекционных заболеваний в результате неправильного обеззараживания предметов ухода за больными. Поскольку не все подобные предметы подлежат обязательной стерилизации, медицинские учреждения самостоятельно определяют, когда нужно проводить уборку, дезинфекцию и стерилизацию, основываясь как на интенсивности использования таких предметов, так и на стоимости проведения подобных мероприятий (во многих случаях это является определяющим фактором). В статье мы рассмотрим новые методы дезинфекции и стерилизации
Рациональный подход к проведению дезинфекции и стерилизации
Более 35 лет назад американский ученый Эрл Х. Сполдинг разработал подход к дезинфекции и стерилизации оборудования и предметов ухода за больными, этот подход был ясен, логичен и рационален и использовался и дополнялся специалистами в сфере дезинфекции на протяжении уже долгого времени. Сполдинг был уверен в том, что частота проведения дезинфекции предмета должна напрямую зависеть от интенсивности его использования. Им были описаны три категории объектов дезинфекции «Критические», «Полукритические», «Некритические». Предметы, относящиеся в категорию «Критических» (те, что должны проникать в стерильные ткани или сосудистую систему пациента, или те через которые проходят потоки крови, имплантируемые устройства), должны быть стерильны в момент использования. «Полукритические» предметы (контактирующие со слизистыми оболочками, поврежденными участками кожи, к примеру эндоскопы, оборудование для дыхательной терапии, диафрагмы) требуют дезинфекцию высокого уровня (т.е. уничтожение всех микроорганизмов, исключая большое число бактериальных спор). Категория «Некритические» (судна, манжеты, прикроватные тумбочки и т.д.) требуют только дезинфекцию низкого уровня.
Ортофтальальдегид: Новое химическое средство стерилизации
Ортофтальальдегид – прозрачная, светло-синего цвета жидкость (pH 7.5), выпускается обычно в концентрации 0.55% по ДВ. Ортофтальальдегид показа отличную антимикробную активность в лабораторных исследованиях. К примеру, он показал гораздо более высокую антимикробную активность (5-log10 снижение численности колонии за 5 минут) в сравнении с глутаральдегидом. Среднее время для достижения 6-log10 снижения численности колонии бактерий M. Bovis, при использовании 0,21% Ортофтальальдегида составило 5 минут, в сравнении с 32 минутами, при использовании 1.5% раствора глутаральдегида. При тестировании активности препарата против широкого спектра микроорганизмов, глутаральдегид-резистентных бактерий и спор Bacillus subtilis, Ортофтальальдегид показал высокую активность против тестируемых бактерий, включая глутаральдегид-резистентные штаммы, но 0.5% раствор Ортофтальальдегида не показал спорацидной активности при экспозиции 270 минут. Увеличение pH c 6.5 до 8 увеличило спорацидную активность вещества. Ортофтальальдегид имеет несколько потенциальных преимуществ в сравнении с глутаральдегидом. Он не требует активации, не вызывает раздражения слизистых оболочек глаз и полостей носа, имеет высокую стабильность при уровне pH от 3 до 9, не требует мониторинга экспозиции и практически не имеет запаха. Как и глутаральдегид, ортофтальальдегид имеет хорошую совместимость с различными метериалами. Потенциальный минус вещества в том, что оно окрашивает белки в серый цвет (включая незащищенный участки кожи), эта проблема решается сопутствующим предупреждением об этом для персонала, пользующегося препаратом (т.е. использования средств защит, перчаток, очков и т.д.). Ограниченные клинические исследования показали, что в 100 случаях стерилизации эндоскопов ортофтальальдегидом с экспозицией 5 минут было достигнуто снижение популяции колоний бактерий более чем на 5-log10 и ортофтальальдегид был эффективен в течение 14-дневного цикла использования. По данным производителя при стерилизации автоматических репроцессоров эндоскопов действие ортофтальальдегида до снижения его эффективной концентрации (около 82 циклов использования) будет длиться дольше в сравнении с глутаральдегидом (до 40 циклов использования).
Сурфацин: Новое антимикробное действующее вещество
Передача некоторых возбудителей внутрибольничных заболеваний, главным образом, устойчивых к ванкомицину Enterococcus spp (VRE), метициллин-устойчивых Staphylococcus aureus, Clostridium difficile (MRSA) связана с заражением ими поверхностей. Передача заболеваний производится косвенным контактом персонала медучреждения с больными или зараженными поверхностями. Исследование проб с поверхностей в больничных палатах зараженных VRE дали положительный результат в 7-37% случаев. Молекулярный анализ штаммов, участвующих во вспышках заболеваний в ряде случаев продемонстрировал, что изоляты, полученные из окружающей среды были идентичны этим штаммам.
Резистентные к антибиотикам патогенны, такие как VRE и MRSA обладают схожей восприимчивостью к дезинфикантам, что и нерезистентные к антибиотикам штаммы. Однако, дезинфиканты, которые обычно используются, к примеру, фенолы или четвертично аммониевые соединения, хоть и эффективны при уничтожении таких патогенов, но не обладают остаточной активностью. Следовательно, после проведения дезинфекции поверхности могут быть заражены вторично достаточно быстро.
Сурфацин – новое, стойкое антимикробное действующее вещество, которое можно использовать как на живых, так и на неживых объектах. Он включает водонерасворимые интимикробные соединения (Иодид серебра) в составе покрытия для поверхностей (модифицированный полигексаметилен бигуанид), способный химически распознавать и взаимодействовать двуслойными липидами бактериальных клеточных мембран с помощью электростатического притяжения. Близкий контакт поверхностей с микробами приводит к передаче антибактериального компонента (серебро) напрямую от покрытия к микроорганизму. Микроорганизмы, контактирующие микроорганизмы накапливают серебро до того момента, пока необходимый уровень токсичности не будет достигнут; мертвые бактерии в конечном счета разрушаются и «открепляются» от поверхности. Количество серебра и количество микроорганизмов, контактирующих с обработанными поверхностями, определяет то, как долго покрытие будет эффективным.
Предварительные исследования показывают, что обработанные поверхности дают хороший эффект в уничтожении резистентных к антибиотикам бактерий, помещенных напрямую на различные поверхности с различным уровнями сложности 100 CFU/кв. см. на протяжении 13 дней. Антимикробная активность сохраниласть при сухой чистке и влажной чистке, с использованием четвертично аммониевых соединений. По данным производителя продемонстрировано удаление бактерий, грибов, дрожжей и вирусов при нанесении препарата на поверхности с уровнем сложности 106 СFU/мл. Устойчивая антимикробная активность была продемонстрирована на тестируемых микроорганизмах. При этом, время удаления микроорганизмов варьируется.
Новое действующее вещество может наноситься на поверхности методами погружения, протирания, орошения, без предварительной обработки этих поверхностей. Покрытие не подвергается фоторедукции, деградации и не приводит к изменению цвета обработанной поверхности при воздействии интенсивного ультрафиолетового излучения. Препарат сцепляется фактически с любыми материалами, он не отслаивается и не трескается. Обработанные поверхности, подвергнутые тесту, в ходе которого были очищены механически, сохранили свою антибактериальную активность. Окончательно обработанные поверхности оставались химически инертны и сохранили свою биоцидную активность после различных физических и химических воздействий, таких как температура (тестировалась температура от -20oС до +130oС), растворители (спирт), вещества с pH от 4 до 10, вещества с высокой ионной силой, стерилизация обычными методами (паром, оксидом этилена, гамма излучением). Покрытие содержащие малое количество иодида серебра (примерно 10 мкг/кв. см покрытой поверхности) и покрытые поверхности резистентны к образованию биопленки. Препарат не токсичен для млекопитающих.
Новый дезинфекант: Оксигенированная вода
Концепция электролиза соли для создания дезинфицирующего средства привлекательна тем, что основные материалы и электроэнергия дешевы, а конечный продукт – вода не загрязняет окружающую среду. Механизм действия не достаточно ясен, возможно он является разновидностью окисляющих препаратов. Основными действующими веществами являются хлорноватистая кислота в концентрации, с примерной концентрацией 144 мг/л и свободные радикалы хлора. Это дезинфицирующее средство производится путем пропускания физраствора через электроды с титановым покрытием при силе тока в 9 А. Получаемое вещество имеет pH 5.0 – 6.5 окислительно-восстановительный потенциал > 950 мВ. Оборудование для производства вещества может быть дорогим, так как такие параметры как pH и окислительно-востановительные потенциал должны тщательно отслеживаться. Вещество, как показано, является нетоксичными для биологических тканей. Хотя, как заявлено, препарат не окисляет и не повреждает эндоскопы, один из производителей эндоскопов аннулировал гарантию на свою продукцию в случае проведения дезинфекции оборудования оксигенированной водой.
Антибактериальная активность была исследована на примере бактерий, микробактерий, вирусов, грибов и спор. Последние исследовния показали, что вновьпроизведенная оксиенированная вода, дает очень быстрый эффект (менее чем за 2 минуты) при уничтожении 5-log10 колонии микроорганизмов (Mycobacterium tuberculosis, M. chelonae, poliovirus, HIV, MRSA, Escherichia coli, Candida albicans, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa) при отсутствии нагрузки по органическим загрязнениям. Необходимы дальнейшие исследования для определения, возможно ли использовать оксигенированную воду в качестве альтернативы другим дезинфекантам.
Режимы стерилизации и стерилизуемые изделия
Химическая стерилизация газами и растворами стерилянтов. Преимущества и недостатки.
Химические вещества используются для низкотемпературной стерилизации крупногабаритных предметов, а также термочувствительных материалов и оборудования, которые приходит в негодность при других методах стерилизации.
1. Газовый способприменяется для стерилизации крупногабаритных изделий, а также термолабильной медицинской аппаратуры и изделий из резины и пластмассы (эндоскопы и принадлежности к ним, диализаторы, катетеры).Используются химические соединения, обладающие безусловным спороцидным действием: окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила. При газовой стерилизации необходимо строго контролировать температуру, влажность, концентрацию стерилизующего газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматическим прохождением цикла.
Окись этилена используется для стерилизации объектов, чувствительных к температуре выше 600C. Окись этилена требует больше времени для стерилизации, чем при тепловой обработке. Обычно стерилизация окисью этилена проводится три часа при 30–600C и относительной влажности выше 30 %, концентрация газа при этом составляет 200–800 мг/л. Окись этилена легко воспламеняется.
Недостаток газовой стерилизации состоит в том, что газы могут вступать в химическую реакцию с материалами изделий, образуя токсичные и канцерогенные соединения. Поэтому после газовой стерилизации необходима дегазация — удаление со стерильных изделий остатков примененного средства в специальных аэраторах в течение 2 часов.
2.Жидкостная стерилизация растворами химических соединений (стерилянтами) применяется для стерилизации термолабильных медицинских инструментов, шовного материала, перчаток, оптических приборов, для хранения игл, инструментов.
Для проведения стерилизации рекомендованы средства, эффективные:
– при комнатной температуре: кислородсодержащие (6-90 % перекись водорода) и хлорсодержащие («Дезоксон–1»), 96 % этиловый спирт;
– при повышенной (до 40–500С) температуре: альдегиды (2% глутаральдегид, формальдегид, 0,55 % ортофталевый альдегид).
Стерилизация растворами химических соединений проводится в стерильных емкостях из стекла, металлов, термостойких пластмасс при полном погружении изделий в раствор при их свободной раскладке. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими.
35–90 % перекись водорода используется для стерилизации тепло- и температурочувствительных предметов, таких как жесткие эндоскопы. Самое большое преимущество перекиси водорода в качестве стерилянта – короткое время цикла: использование высоких концентраций перекиси водорода позволяет сократить время цикла стерилизации в современных установках до 28 минут. Перекись водорода может быть смешана с муравьиной кислоты в устройствах для стерилизации эндоскопов.
Однако не все объекты могут быть простерилизованы перекисью водорода и ее, проникающая способность ниже, чем у окиси этилена.
Альдегиды. Стерилизация формальдегидом проводится при температуре 60–800С в течении 60 минут. Многие вакцины стерилизуют формальдегидом. Формальдегид нельзя использовать для стерилизации оптических инструментов, эндоскопической аппаратуры, имплантатов.
0,2 % уксусная кислота используется для стерилизации инструментов.
0,01 % мертиолят натрия применяют для консервирования сывороток и жидких вакцин.
Антибиотикидобавляют в питательные среды при проведении вирусологических и иммунологических исследований.
Ионы серебра оказывают токсическое действие на некоторые бактерии, вирусы, водоросли и грибы благодаря олигодинамическому действию серебра. Однако тестирование и стандартизация этого метода стрилизации затруднительна.
Прионы обладают высокой резистентностью к химической стерилизации. Хлор и гидрокид натрия являются самыми эффективными в отношении прионов.
Недостатки стерилизации растворами химических соединений:
– к стерилизации необходимо готовиться так же, как к работе в операционной (стерильные халат, перчатки, бахилы, маска). Помещение должно быть оборудовано по типу бактериологического бокса;
– по окончании процесса необходима нейтрализация стерилизующего раствора стерильной дистиллированной водой;
– химические средства часто имеют короткий срок годности, вызывают коррозию инструментов; необходимо использовать вещества, химически совместимые с обрабатываемыми объектами;
– невозможность стерилизовать упакованные изделия;
– трудность контроля эффективности обработки;
– использование химических стерилянтов создает новые проблемы для безопасности труда: многие химические стериляны летучи и токсичны при контакте с кожей и слизистыми оболочками.
Поэтому растворы химических средств целесообразно использовать для стерилизации только в тех случаях, если применение других разрешенных методов стерилизации не представляется возможным.
Представляет интерес технология проведения стерилизации с использованием электрохимически активированных растворов (анолитов), вырабатываемых в специальных установках.
Преимущества электрохимически активированных растворов заключаются в том, что при наличии электроэнергии эти средства можно получать непосредственно в ЛПУ из питьевой воды и поваренной соли. «Нейтральный анолит» рекомендуется для стерилизации эндоскопов при комнатной температуре в течение 45 минут.
Недостатком этих средств является повреждающее действие на изделия из коррозионнонестойких металлов.
3. Плазменная стерилизация.Плазма — продукты распада пероксида водорода, образующиеся под воздействием электромагнитного излучения.
Плазменная стерилизация проводится при температуре 46-500С в течение 54–72 минут. Плазменные стерилизаторы могут быть использованы как при централизованной, так и при децентрализованной системе организации стерилизации. Самый малый плазменный стерилизатор занимает площадь 1 м2, объем его рабочей камеры 50 л.
Пероксид водорода распадается на нетоксичные продукты — воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на человека и окружающую среду.
Недостатки плазменной стерилизации:
– не подлежат стерилизации плазмой изделия из целлюлозы, полиамида, каучука, порошки, жидкости, хирургическое белье, перевязочный материал;
– малодоступный метод для широкого применения в ЛПУ из-за высокой стоимости оборудования. Использование плазменного метода наиболее приемлемо для стерилизации уникальных термолабильных изделий, имеющихся в единичном экземпляре и используемых неоднократно в течение рабочего дня. Для повседневной рутинной стерилизации стоит выбрать более доступный и дешевый метод;
– отсутствуют общепризнанные международные стандарты для данного метода.
4. Озоновая стерилизация. Озон является сильным окислителем. В течение многих лет озон используется на промышленных объектах для стерилизации питьевой воды и воздуха, а также для дезинфекции поверхностей. Недавно он был предложен для стерилизации в медицине. Стерилизация производится в специальных аппаратах озоно-воздушной смесью, продуцируемой генератором озона из атмосферного воздуха.
Недостатки озоновой стерилизации:
– окислительная способность озона ограничивает его спектр применения. При контакте с озоном могут повреждаться изделия из стали, меди, резины;
– озон токсичен, а имеющиеся сегодня аппараты не позволяют обезопасить персонал от контакта с ним;
– озон нестабилен;
– разработка режимов стерилизации применительно к конкретным изделиям оказалась проблематичной из-за ограничений в возможностях созданных образцов аппаратов.
Цель дезинфекции и стерилизации медицинских приспособлений – нейтрализация и уничтожение микроорганизмов. В стремлении сэкономить некоторые руководители клиник пренебрегают соблюдением санитарных норм. Результатом становится повышение риска распространения инфекционных болезней среди пациентов и персонала. Правильное обеззараживание медицинских изделий важно для поддержания здоровой атмосферы.
Оценка качества дезинфекции проводится путем смывов на выявление инфекционных возбудителей. Выполняется контроль 1% из партии изделий, прошедших обработку, но не менее трех штук. При отсутствии увеличения числа микроорганизмов очистка признается успешной.
Этапы обработки:
- Дезинфекция.
- Предстерилизационная очистка.
- Стерилизация.
Организация этих мероприятий проводится в соответствии с действующими нормативными актами.
Дезинфекционная обработка
Подразумевает ликвидацию условно-патогенной и патогенной флоры на предметах интерьера, поверхностях помещения, приспособлениях и расходных материалах, используемых в работе медицинского учреждения.
Задача дезинфекционной очистки – предупреждение и устранение накопления, репродукции и распространения болезнетворных микроорганизмов. Существует два вида обработки.
Профилактическая
Минимизирует риск инфицирования. Заключается процедура в проведении регулярной влажной уборки и еженедельной генеральной уборки помещений с высокими требованиями к стерильности.
Очаговая
Выполняется при подозрении и выявлении инфекционного очага.
Препараты для дезинфекции
Вид и концентрация препарата определяются возбудителем инфекции. Исходя из вида медицинского предмета, проводится дезинфекция высокого, промежуточного или низкого уровня.
Классификация обрабатываемых изделий:
- «Некритические». Находятся в контакте с неповрежденными кожными покровами.
- «Полукритические». Взаимодействуют с кожей и слизистыми оболочками, имеющими повреждения.
- «Критические». Погружаются в стерильные ткани, сосуды. Взаимодействуют с кровью и растворами для инъекций.
ДВУ применяется для «критических» изделий. Уничтожает микробы, но не бактериальные споры.
ДПУ провоцирует гибель вегетативных форм бактерий, грибов, вирусов. Не воздействует на споры бактерий. Устойчивость к методу демонстрируют мелкие нелипидные вирусы. Обрабатываются «полукритические» инструменты.
ДНУ применяется против вегетативных форм микроорганизмов. Обрабатывается часть «полукритических» и «некритических» изделий.
Методы дезинфекционной обработки:
- Механический. Мойка поверхностей, уборка пылесосом, вентиляция, проветривание.
- Физический. Кипячение, автоклав, сухожаровый шкаф.
- Химический. Погружение в дезраствор.
- Бактериологический. Применяются узкоспецифичные бактериофаги.
Классификация химических средств дезинфекции
Чаще всего применяются в клиниках. По химическому составу средства подразделяются на группы:
- Галогеносодержащие. Активное вещество – йод, бром или хлор.
- Кислородосодержащие. Действующий компонент – кислород, который выделяется из перекиси водорода, надкислот и перекисных соединений.
- ПАВы. Обеспечивают возможность совмещения дезинфекционной и предстерилизационной обработки.
- Гуанидсодержащие. Сложные органические соединения, воздействующие на широкий спектр микроорганизмов.
- Альдегидсодержащие. Янтарный и глутаровый альдегид. Оказывают бактерицидное, спороцидное, фунгицидное и вирулоцидное действие. Негативно действуют на макроорганизмы.
- Спирты. Предназначены для очищения оборудования и поверхностей.
- Фенолсодержащие. Амоцид и Амоцид 2000 — предназначены для дезинфекционной обработки очагов туберкулеза.
Правила проведения
Инструменты помещаются в дезраствор после применения, так чтобы жидкость покрывала изделия на 1 см над поверхностью. Предметы сложной конструкции обрабатываются в разобранном виде. В полостях не должно быть пузырьков воздуха. При сильных загрязнениях проводится двукратная процедура.
Обработка приспособлений из стекла, пластмассы, резины выполняется хлорсодержащими средствами. Запрещено использовать ерш для изделий из резины.
Металлический инструментарий длительного применения обрабатывается веществами, не вызывающими коррозии.
По завершению процедуры приспособления промываются водой.
Меры предосторожности:
- рабочие растворы готовятся в местах с хорошей вентиляцией;
- применяются перчатки, очки и респираторы;
- хранение растворов в герметичных емкостях;
- концентрат запрещено разводить водой повышенной температуры;
- не разрешена промывка предметов проточной водой до дезинфекционной обработки.
Обязанности дезинфекции возлагаются на средний медицинский персонал.
Предстерилизационная обработка
Инструменты, контактирующие с ранами и слизистыми оболочками, требуют проведения стерилизации. На предварительном этапе удаляются мелкие частицы и белковые соединения. Применяются дезинфектанты или специальные растворы.
Качество очистки каждый день оценивается путем биологических и химических проб.
Стерилизация
«Критические» предметы подвергаются абсолютной стерилизации для уничтожения микроорганизмов и бактериальных спор.
Виды стерилизации:
- Химический. Плазменный способ или воздействие химическими растворами.
- Физический. Подразумевает воздействие паром, нагретым воздухом, УФ излучением. В стоматологии применяется гласперленовый способ.
- Газовый. Воздействие смесью окиси этилена и углекислого газа.
Успешная стерилизация возможна при соблюдении условий: подача пара под напором, режим температуры, период воздействия.
Виды стерилизаторов
Приборы, принцип действия которых основан на УФ излучении. Инструменты обрабатываются 25 минут.
Доступны разные модели аппаратуры для обработки мелких инструментов. Например, гласперленовый стерилизатор – камера с шариками из стекла, нагревающимися до 240 градусов. Применяется в стоматологии.
Некоторые ЛПУ применяют газовые стерилизаторы. Подобные устройства предусматривают возможность стерилизации упакованных материалов. Недостатки: дороговизна и длительная экспозиция.
Плазменные стерилизаторы SPS – современная методика обработки инструментов и оборудования, чувствительных к влажности и повышенному температурному режиму.
Для того чтобы уничтожить патогенные микроорганизмы — вирусы, бактерии, грибы — на поверхностях, каналах и полостях инструментов и материалов в лечебных учреждениях проводится тщательная дезинфекция изделий медицинского назначения. Порядок ее применения регулируется нормативными документами — ГОСТ 25375-82 и новым СанПиН 2.1.3678-20, где строго регламентирован порядок обработки медицинских инструментов дезинфицирующими растворами и средствами.
Все медицинские изделия после их контакта с пациентами подлежат дезинфекции. Цель санитарных профилактических мероприятий — воспрепятствование распространению возбудителей опасных инфекций (ВИЧ, гепатита и других) и заболеваний у пациентов и персонала лечебных учреждений.
Порядок обработки медицинских инструментов дезинфицирующими средствами
Эффективная стерилизация и дезинфекция медицинских изделий делаются по следующим этапам:
- Предварительная очистка или обработка.
- Предстерилизационная очистка (для эндоскопов является окончательной).
- Стерилизация инструментов (ДВУ для эндоскопов).
Применение результативных методов гарантирует уничтожение вирусной и бактериальной среды, препятствует распространению инфекционных заболеваний. Качество процесса проверяется контролем одного процента обработанной партии изделий медицинского назначения (минимально трех штук). Если показатели патогенной среды после обработки в норме, процесс оценивается успешно.
Дезинфекционные мероприятия
Качественная дезинфекция изделий медицинского назначения проводится с целью предупредить и устранить появление и распространение различных болезнетворных микроорганизмов на:
- поверхностях и предметах интерьера медицинских организаций;
- лечебном оборудовании;
- расходных рабочих материалах.
Существует два вида дезобработки:
Делается влажная уборка на регулярной основе, предотвращающая появление патогенных возбудителей инфекционных болезней. Кроме ежедневных профилактических уборочных мероприятий, раз в неделю делается генеральная уборка медучреждения с повышенными требованиями. Направлена на профилактику внутрибольничных условий содержания пациентов и работы персонала учреждений.
Этот вид дезобработки применяется, если найден очаг инфекции. Для него используются различные сильнодействующие препараты.
Средства для дезинфекции
Применение препаратов зависит от уровня дезинфекции, которая бывает высокого (ДВУ), промежуточного (ДПУ) или низкого (ДНУ) уровней. Выделяют следующие виды обрабатываемых изделий:
- некритические, контактирующие с кожными покровами, которые не повреждены;
- полукритические, если есть контакт с поврежденной кожей или слизистой оболочкой;
- критические, используемые для контакта с кровью больного, инъекционными растворами.
Для последних случаев делают ДВУ с полным уничтожением микробов, для полукритических инструментов применяют ДПУ, которая не уничтожает мелкие вирусы липидного характера, а ДНУ используют против вегетативных форм болезнетворных организмов.
Предстерилизационная очистка
На этапе, предшествующем стерилизации инструментов, делается удаление мелких частиц и соединений белка с их поверхностей и каналов при помощи специальных дезинфектантов. Процесс очистки контролируется через биологические и химические пробы и делается для инструментов, имевших контакт с ранами и слизистой оболочкой пациентов.
Стерилизация
Обязательна для «критических» медицинских изделий! Режим стерилизации полностью уничтожает микроорганизмы и споры бактерий. Применяются химический, физический, газовый и УФ-методы стерилизации, о которых подробнее расскажем ниже. Важные элементы успеха процесса — это:
- пар подается под давлением;
- оптимизируется температурный режим;
- устанавливается необходимый временной промежуток воздействия.
При соблюдении всех этих условий достигается максимальная эффективность стерилизации.
Методы дезинфекционной обработки
К основным методам дезинфекции изделий медицинского назначения относятся:
- механические, которые предусматривают очистку поверхностей моющими растворами, использование пылесоса, полное проветривание помещений;
- физические методы дезинфекции изделий медицинского назначения. Это ведущие способы очистки, которым отдается предпочтение из-за их экологической чистоты и безопасности для персонала учреждений. Они включают кипячение, использование автоклава, применение сухожарового шкафа с горячим воздухом;
- химические, использующие погружение мед. изделий в специальные растворы;
- бактериологические с применением «пожирателей» бактерий (бактериофагов).
В результате использования этих способов достигается эффективная обработка разных видов медицинских инструментов и материалов.
Классификация химических средств дезинфекции
В условиях клиник для химических методов дезинфекции изделий медицинского назначения используются специальные средства:
- Галогенсодержащие с хлором, бромом или йодом.
- Кислород активные из перекиси водорода и надкислот. Гуанид- и альдегидсодержащие вещества. Эффективно действуют на микроорганизмы, но альдегиды применяются с большой осторожностью из-за возможного вреда для организма человека.
- Фенолсодержащие при очаговой дезинфекции туберкулеза.
- ЧАСы (четвертично аммониевые соединения) — используются очень редко, как правило они действуют вместе с другими веществами, например, с гуанидинами или альдегидами.
Химические вещества тщательно подбираются для различных нужд дезинфекционной обработки.
Правила проведения дезинфекции мед. инструментов
Основные правила:
Изделия помещаются в специально составленные растворы, жидкость — на 1 см выше поверхности инструмента. Сложные конструкции предварительно разбираются. Полости проверяются на наличие воздуха, пузырьков быть не должно. Для стеклянных, пластмассовых, резиновых изделий рекомендуются хлорсодержащие растворы. Для резиновых вариантов изготовления не используется ёрш. Для металлических инструментов недопустимо использование растворов, вызывающих коррозию. Когда процедура завершена, изделия тщательно промываются водой. Если они сильно загрязнены, процесс проводится повторно.
Растворы используют сильнодействующие дезинфицирующие вещества и соблюдаются меры предосторожности:
- улучшенная вентиляция в местах их приготовления;
- использование персоналом очков, респираторов, перчаток;
- герметичность емкостей для растворов;
- концентрат не разводится горячей водой;
- промывка мед. изделий проточной водой до дезинфекции не делается.
После дезинфекции приходит время предстерилизационной обработки и стерилизации.
Виды стерилизации
Существует несколько способов стерилизации.
По температуре:
- Низкотемпературная
- Высокоготемпературная.
По виду воздействия:
- Химическая
- Плазменная
- Газовая (промышленная)
- Температурная (автоклавирование).
Виды стерилизаторов
Сейчас существует несколько разновидностей стерилизаторов:
- автоклавы, которые стерилизуют паром под высоким давлением и температурой 127-134 градуса;
- плазменные SRS с использованием ультрасовременных технологий для того оборудования, которое не переносит повышенные уровни влажности и температуры.
Эти стерилизационные приборы дают хорошие результаты.
Дезинфекция высокого уровня (ДВУ)
Для ДВУ применяют исключительно лицензированные средства. Дезинфекция нужна для полного избавления от биозагрязнений и проводится в специальном дезинфектанте. К таким препаратам относятся «Клиндезин 3000», «Клиндезин ОПА Рус», «Клиндезин ОПА Плюс», «Клиндезин ОКСИ», «Раписайд ОПА 28», «Сайдекс ОПА», «Раписайд ПА РТУ» и другие. В зависимости от препарата время ДВУ — от 5 минут до часа. Дезинфекция высокого уровня применяется к гибким эндоскопам и ЛОР-эндоскопам.
Виды санитарных уборок в медицинском учреждении
Дважды в день в медицинских учреждениях делается стандартная влажная уборка помещений на регулярной основе. Кроме ежедневных уборок, проводятся генеральные. Их периодичность следующая:
- в блоке операционных, залах приема родов, кабинетах перевязки и стоматологии — раз в неделю;
- в инфекционных отделениях — раз в декаду;
- в обычных отделениях — раз в месяц, а в санузлах и подсобках — 2 раза в месяц.
Регулярные санитарные уборки — важная часть профилактики!